[PDF] COLORATION AU BLEU DE METHYLENE COLORATION DE GRAM





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1ère STL Fiche technique n°5

COLORATION AU BLEU DE METHYLENE

1. Principe

IM ŃRORUMPLRQ MX NOHX GH PpPO\OqQH %0 HVP XQH ŃRORUMPLRQ PUqV VLPSOH TXL SHUPHP G·RNVHUYHU

les bactéries, les champignons, mais aussi les cellules qui sont en général mieux conservées

TX·MYHŃ OM ŃRORUMPLRQ GH *ram. Elle permet de renseigner sur : - la forme des bactéries - la taille - le mode de regroupement

2. Technique

Réaliser un frottis et le fixer.

Recouvrir la lame de bleu de méthylène phéniqué, 1 à 2 minutes.

Rincer à O·HMX GLVPLOOpHB

Sécher la lame entre 2 feuilles de papier Joseph. Observer à O·RNÓHŃPLI [100 j O·LPPHUVLRQ GMQV O·OXLOH HP à pleine lumière.

COLORATION DE GRAM

1. Principe

La coloration de Gram permet de distinguer les bactéries à Gram négatif qui apparaissent

roses et les bactéries à Gram positif qui apparaissent violettes. Cette différence de

coloration est liée à des différences de nature de la paroi bactérienne.

Elle permet de renseigner sur :

- Le type Gram + ou Gram - - la forme des bactéries - la taille - le mode de regroupement

2. Technique

Réaliser un frottis et le fixer.

plonger la lame dans le violet de gentiane (ou cristal violet) phéniqué pendant 1 minute.

OMYHU OM OMPH j O·HMX GLVPLOOpHB

plonger la lame dans une solution de lugol pendant 1 minute

IMYHU j O·HMX GLVPLOOpH

Décolorer dix secondHV j O·MOŃRROB

5H1F(5 H00(GH$7(0(17 $ I·($8 GH67HII((

plonger la lame dans la safranine (ou la fuchsine) phéniquée pendant 1 minute

OMYHU OM OMPH j O·HMX GLVPLOOpHB

Sécher la lame en la tamponnant avec du papier Joseph. Observer j O·RNÓHŃPLI [100 j O·LPPHrsion GMQV O·OXLOH HP à pleine lumière.quotesdbs_dbs23.pdfusesText_29
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