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  • Comment est assurée l'adhésion des cellules entre elles ?

    L'adhérence cellulaire est permise d'une part gr? à la présence d'une matrice extracellulaire (adhérence indirecte) et d'autre part par la formation d'adhérence directe par la présence de molécules d'adhérence au sein des membranes plasmiques.
  • La plupart des molécules d'adhérence sont des glycoprotéines sécrétées par les cellules mêmes ou par d'autres cellules et libérées dans le liquide interstitiel pour former la matrice extracellulaire (MEC). Elles facilitent l'adhérence des cellules entre elles et avec le substrat (figure ci-contre).
billes uorescentes 200nm lamelle de verre hydrogel protéines cellule

UV 180nm

billes uorescentes 200nm

Masque en Quartz

lamelle de verre hydrogel

NHS/EDC

protéines cellules billes uorescentes 200nm lamelle de verre hydrogel protéines cellule

Trypsine

T T T cell 1 cell 2 cell 1 cell 2 1 = x.T x 2 = y.T y 1 2 d F

Mu1Mu2

Mu1>Mu2

F Marquage Kindlin2Masque des adhésionsMarquage Talin

On applique le masque

sur le 2ième marquage

Création du masque

051015

9EG7 1 = x.T x 2 = y.T y 1 2 d F

Mu1Mu2

Mu1>Mu2

F T

Contractile energy (pJ)

3-/-

3Y784Fs

3Y772Fs

3N304Ts

3D748A+E751A

3R785stops

3-/- 3GFP

00,20,40,60,8

Contractile moment (N.m)

3-/-

3Y784Fs

3Y772Fs

3N304Ts

3D748A+E751A

3R785stops

3-/- 3GFP -5.10-11-4.10-11-3.10-11-2.10-111.10-11 0 3-/-

3Y784Fs

3Y772Fs

3-/- 3GFP 2

500100015002000

3N304Ts

3D748A+E751A

3R785stops

Cell X

Protéine X

fusionnée à KillerRed

Irradiation

ARTICLE

Received 17 Jan 2014|Accepted 27 Mar 2014|Published 7 May 2014

AmotL2 links VE-cadherin to contractile act

in bres necessary for aortic lumen expansion

Sara Hultin

1 , Yujuan Zheng 1 , Mahdi Mojallal 1 , Simona Vertuani 1 , Christian Gentili 1 , Martial Balland 2

Rachel Milloud

2 , Heinz-Georg Belting 3 , Markus Affolter 3 , Christian S.M. Helker 4 , Ralf H. Adams 5

Wiebke Herzog

4,5,6 , Per Uhlen 7 , Arindam Majumdar 1, * & Lars Holmgren 1, The assembly of individual endothelial cells into multicellular tubes is a complex morphogenetic event in vascular development. Extracellular matrix cues and cell-c ell junctional communication are fundamental to tube formation. Together they determine the shape of endothelial cells and the tubula r structures that they ultimately form. Little is known regarding how mechanical signals are transmitted between cells to control cell shape changes during morphogenesis. Here we provide evidence that the scaffold protein amotL

2 is needed

for aortic vessel lumen expansion. Using gene inactivation strategies in zebra sh, mouse and endothelial cell culture systems, we show that amotL2 associates to the VE-cadherin adhesion complex where it couples adherens junctions to contractile actin bres. Inactivation of amotL2 dissociates VE-cadherin from cyt oskeletal tensile forces that affect end othelial cell shape. We propose that the VE-cadherin /amotL2 complex is responsible for trans mitting mechanical force between endothelial cells for the coordination of cellular morphogenesis consistent with aortic lumen expansion and function.

DOI: 10.1038/ncomms4743

1

Department of Oncology and Pathology, Cancer Center Karolinska, Karolinska University Hospital, 171 76 Stockholm, Sweden.

2

Laboratoire interdisciplinaire

de Physique, Universite

´Joseph Fourier (Grenoble 1), Domaine Universitaire, Bat. E45 140, rue de la physique, Saint Martin d´He`res Cedex 9 38402 Grenoble,

France.

3 Abt. Zellbiologie, Biozentrum/Uni Basel, Klingelbergstrasse 70, CH 4056 Basel,

Switzerland.

4

Biological Faculty, University of Muenster, 48149

Muenster, Germany.

5

Max Planck Institute for Molecular Biomedicine

, 48149 Muenster, Germany. 6

Cluster of Excellence EXC 1003, Cells in Motion,

CiM -, 48149 Mu

¨nster, Germany.

7 Department of Medical Biochemistry and Biophysics, Karolinska Institute, 171 77 Sto ckholm, Sweden. *These authors contributed equally to this work. Corr espondence and requests for materials sh ould be addressed to L.H. (email: lars .holmgren@ki.se). NATURE COMMUNICATIONS|5:3743|DOI: 10.1038/ncomms4743|www.nature.com/naturecommunications1 2014

Macmillan Publishers Limited. All rights

reserved. T he genesis of biological tubes is central to the physiology of glandular organs and the vascular circulatory network. In vertebrates, the primary axial blood vessels, the dorsal aorta (DA) and cardinal vein, are forme d through vasculogenesis.

During this process, individual mesodermal ang

ioblasts migrate to the embryonic midline and differentiate into endothelial cells. Upon reaching their destination, endothelial cells elongate to form parallel cords followed by the forma tion of a central lumen allowing for the initiation of circulation 1-4 Recent investigations have shed light on the molecular mechanisms of aortic lumen formation (reviewe d in refs 3,5,6). Model systems recreating endothelial tubulogenesis in vitro have identi ed the cytoskeleton, apical-basal polarity as well as cell-cell adhesion components as being cruc ial for lumenization of tubes 7 . This has been further emphasized by studies of aortic lumen formation by genetic inactivation in mouse where modulators of the cytoskeleton (RASIP1), pol arity (beta1 integrin and Par3) and cell-cell adhesions (VE-cadherin) all show luminal defects of the DA 8-11 . Aortic lumen expansion is synchronized with the onset of cardiac fu nction, which suggests a tight coordination of these signalling pathway s with ow-induced morphological changes of endothelial cells dur ing vascular development. The de novo development of blood vessels in response to morphogenic gradients of growth factors such as VEGF has been extensively studied (reviewed in refs 1,12-1

5). Less is known

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