[PDF] TP n°4: Observation microscopique des bactéries après coloration de GRAM





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C'est l'examen microscopique de bactéries vivantes en milieu liquide. Il L'examen après coloration permet d'observer des bactéries tuées fixées sur une lame.



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Les colorations réalisées sur des frottis secs et fixés



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Examen direct : examen microscopique. Page 10. Examen après coloration. Coloration de Gram : coloration de la paroi bactérienne. Donne une orientation sur le 



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(l'alcool dissout le violet de gentiane). О Chez les bactéries à GRAM positif dont la paroi est pauvre en lipides



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Réaliser des frottis bactériens ;. • Déterminer la morphologie des bacteries et leur mode de groupement après une coloration simple des frottis. 1-Introduction 



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d'obtenir une suspension plus homogène et moins riche en bactéries. 2. Examen microscopique après coloration. Les colorations sont indispensables à l'étude 



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Les colorations réalisées sur des frottis secs et fixés



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N°6 - L'EXAMEN MICROSCOPIQUE DES BACTÉRIES. TP. N°7 - EXAMEN APRÈS COLORATION. T P. N° 8 - COLORATION DIFFERENTIELLE DE GRAM.



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Rédigé par : BELMESSIKH A. et MERGOUD L.

Manuel des travaux pratiques de Microbiologie générale 2ème année LMD 1 TP n°4: Observation microscopique des bactéries après coloration de GRAM La coloration des bactéries est un moyen de manière à mieux les observer en microscope à fond clair.

Dans les conditions normales, les procaryotes ont en général un pH intracellulaire neutre et une

surface cellulaire globalement chargée négativement. icacité des colorants basiques pour observation de la morphologie bactérienne. ¾ soit sur des cellules vivantes en utilisant des colorants dilués; ¾ soit sur des cellules tuées par FIXATION en utilisant des colorants concentrés.

Toutes les techniques de coloration sur des bactéries tuées requièrent trois étapes principales :

- La préparation du frottis - La fixation - La coloration proprement dite : *Coloration simple (un seul colorant) ou *Coloration différentielle type Gram (deux colorants) ou *Colorations spéciales des structures bactériennes (capsules, spores, flagelles. Vous disposez de trois cultures bactériennes : de Staphylococcus, de Bacillus et E. coli. Les manipulations suivantes vont être réalisées pour les trois bactéries.

1. Préparation du frottis

" sur une lame de verre ».

Pour ce faire :

1. Notez la référence de la bactérie échantillon sur un coté une lame parfaitement propre et

dégraissée. 2.

3. Prélever stérilement colonie bactérienne

poussée sur milieu gélosé.

4. Faites émulsionner cette colonie .

5. Les frottis doivent être étalés en couche mince et régulière pour bien séparer les cellules

bactériennes, puis séchés ;

5.1. Etalement : Etalez en couche mince des mouvements circulaires.

5.2. Séchage : dans la zone stérile

frottis présente un aspect mat.

2. Fixation du frottis sec

Cette étape a pour but :

¾ De tuer les bactéries ; ce qui rend leurs membranes plus perméables aux colorants. ¾ De fixer la structure cytologique des bactéries et donc fixer la forme sans . ¾ De faire coller les bactéries à la surface de la lame. soit par , soit par la chaleur

Fixation par chaleur

La lame, tenue par une pince (frottis situé sur le dessus) est passée 3 ou 4 fois dans la flamme du

bec Bunsen.

Laisser refroidir

Rédigé par : BELMESSIKH A. et MERGOUD L.

Manuel des travaux pratiques de Microbiologie générale 2ème année LMD 2 Maintenant, notre frottis est prêt à différents types de coloration

3. Coloration de GRAM

3.1. Principe

la coloration de base en bactériologie, elle est dite différentielle car elle permet de

différencier et de classer la majorité des bactéries en 2 grands groupes (les GRAM + et les

GRAM-), selon la différence de la composition de leur paroi cellulaire ; et par conséquent selon leur

aptitude à fixer ou non un colorant. Cette distinction (GRAM + ou GRAM -) est fondamentale pour identification bactérienne. Pour ce faire :

9 Le violet de gentiane se fixe sur des composants cytoplasmiques et après ce temps de

coloration, toutes les bactéries sont violettes. 9

9 Les lipides sont très solubles dans , en effet :

 Chez les bactéries à GRAM négatif, dont la paroi est riche en lipides, pauvre en

peptidoglycane, l perméabilité de la paroi. facilement au cytoplasme et le décolore ( dissout le violet de gentiane). Â Chez les bactéries à GRAM positif, dont la paroi est pauvre en lipides, riche en peptidoglycane, ce dernier constitue une barrière imperméable à l'alcool et le cytoplasme demeure alors coloré en violet.

9 La fuchsine est utilisée afin de pouvoir observer les bactéries à GRAM négatif qui sont

devenues incolores.

 Les GRAM négatifs se recolorent en rose.

 Les GRAM positifs gardent leur couleur violette.

3.2. Mode opératoire

Sur le frottis fixé et refroidi :

Faire couler la solution de Violet de Gentiane sur la lame jusqu'à ce que tout le frottis soit recouvert; laisser en contact 1 minute.

Jeter le colorant et finir de la chasser par la solution de Lugol ; laisser le agir environ 1 minute.

Jeter le Lugol et faire couler goutte à goutte pendant 10 secondes sur la lame inclinée; R . Recouvrir la préparation de la Fuchsine (ou Safranine), laisser agir 1 minute.

Rincer abondamment la lame à l'eau distillée, ou à l'eau du robinet jusqu'à élimination du

colorant en excès. Sécher la lame au dess, ou la sécher délicatement entre deux feuilles de papier filtre fin (ou buvard), sans frotter.

Examiner aobjectif à immersion (x100).

Rédigé par : BELMESSIKH A. et MERGOUD L.

Manuel des travaux pratiques de Microbiologie générale 2ème année LMD 3

Résultats

- Des bactéries colorées en violet foncé ; elles ont gardé le violet, sont dites GRAM ; - Des bactéries colorées en rose ; elles ont perdu le violet, sont dites GRAM .

Cette coloration permet AUSSI l'étude de la morphologie et le mode de regroupent des bactéries.

- Consignez vos observations dans ce tableau : Résultats obtenus après observation microscopique à immersion (x100)

Dessin de la forme Mode de regroupement GRAM

E.coli

Staphylococcus

Bacillus

Morphologies et modes

de regroupent bactériensquotesdbs_dbs4.pdfusesText_7
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