[PDF] TESTS IMMUNOLOGIQUES: Expression et interprétation des résultats





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Document Cofrac SH GTA 06

GUIDE TECHNIQUE D'ACCREDITATION – CONTROLE DE QUALITE EN BIOLOGIE MEDICALE comparaison avec des témoins positif et négatif ou par l'apparition d'une ...



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1 juil 2017 · 928 laboratoires ont réalisé le dépistage des anticorps anti-VHC : 999 ont fourni une bonne réponse sur l'échantillon négatif 15VA1 et 999  



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Méthode qualitative : Elle fournit des résultats exprimés sous un format non numérique (par exemple : Présence/absence positif/négatif) 



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Les témoins négatifs • permettent de montrer le résultat obtenu en cas de test négatif ; • permettent de montrer qu'une condition attendue comme négative 



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L'objectif de cette démarche est de garantir la fiabilité des examens de biologie médicale réalisés et la qualité de la prestation médicale offerte par un 

  • Qu'est-ce qu'un contrôle négatif ?

    Les témoins négatifs servent à vérifier la présence de liaisons non spécifiques et de résultats faussement positifs. Ils permettent de valider les résultats positifs. Sans témoin négatif, on ne peut pas être sûr que les résultats sont vraiment positifs.
  • Qu'est-ce qu'un contrôle positif et négatif ?

    Les contrôles positifs sont analysés pour vérifier que la méthode est capable d'amplifier l'acide nucléique provenant de l'organisme étudié. Les contrôles négatifs devraient être analysés pour vérifier qu'aucun acide nucléique contaminant n'a été introduit dans le mix ou dans les échantillons pendant les manipulations.
  • Les contrôles positifs sont destinés à valider les conditions de test en laboratoire. Ils permettent également de se familiariser avec les types de signaux spécifiques obtenus dans les kits de Coris BioConcept.

TESTS IMMUNOLOGIQUES:

Expression et interprétation des résultats

Catherine Farnarier

Laboratoire d'Immunologie

Hôpital de la Conception

CHU Marseille

2

La tuberculose est la première cause

mondiale de mortalité infectieuse.

3 millions de décès par an

1/3 de la planète est infecté

dans 90% des cas infection latente qui

évoluera dans 10% des cas en

tuberculose active

En France depuis 1997 10/100 000/an

Recherche de

l'infection tuberculeuse latente

Intérrogatoire

Image radiologique

l'IDR à la Tuberculine

Les limites de l'DR

Faible spécificité

- Réaction croisée avec le BCG - Mycobactéries non tuberculeuses (NTM)

Sensibilité moyenne

Effet "Booster"

Réalisation pratique

Injection

- Nécessité de 2 visites - Subjectivité 5

MCP-1, IP-10...

La réaction immunitaire

6

Séléction d'antigènes spécifiques

Antigènes

communs avec le

BCGAntigènes

spécifiques de M. tuberculosis

Codage par les

gènes de la région RD-1 7

Specificité d' ESAT-6

(early secreted antigen target 6) et de CFP-10 (culture filtrate protein 10)

Mycobactéries

non -TB Antigènes

ESAT CFP

M abcessus - -

M avium - -

M branderi - -

M celatum - -

M chelonae - -

M fortuitum - -

M gordonii - -

M intracellulare - -

M kansasii + +

M malmoense - -

M marinum + +

M oenavense - -

M scrofulaceum - -

M smegmatis - -

M szulgai + +

M terrae - -

M vaccae - -

M xenopi - -Complex

TuberculosisAntigènes

ESAT CFP

M tuberculosis + +

M africanum + +

M bovis + +

Souches BCG

gothenburg - - moreau - - tice - - tokyo - - danish - - glaxo - - montreal - - pasteur - - 8

Antigènes spécifiques de la TB:

ESAT-6, CFP-10 et TB 7.7

• Induisent la sécrétion d' IFN-Ȗ • Identifiés par immunologie, biologie moléculaire 9

ESAT-6 & CFP-10

MAEMKTDAATLAQEAGNFERISGDL

GNFERISGDLKTQIDQVESTAGSLQ

DQVESTAGSLQGQWRGAAGTAAQAAV

AAGTAAQAAVVRFQEAANKQKQELD

AANKQKQELDEISTNIRQAGVQYSR

IRQAGVQYSRADEEQQQALSSQMGF

MAEMKTDAATLAQEAGNFERISGDL

GNFERISGDLKTQIDQVESTAGSLQ

DQVESTAGSLQGQWRGAAGTAAQAAV

AAGTAAQAAVVRFQEAANKQKQELD

AANKQKQELDEISTNIRQAGVQYSR

IRQAGVQYSRADEEQQQALSSQMGF

MTEQQWNFAGIEAAASAIQG

GIEAAASAIQGNVTSI

SAIQGNVTSIHSLLDEGKQSLTKLA

EGKQSLTKLAAAWGGSGSEAYQGVQ

SGSEAYQGVQQKWDATATELNNALQ

TATELNNALQNLARTISEAGQAMAS

NLARTISEAGQAMASTEGNVTGMFA

MTEQQWNFAGIEAAASAIQG

GIEAAASAIQGNVTSI

SAIQGNVTSIHSLLDEGKQSLTKLA

EGKQSLTKLAAAWGGSGSEAYQGVQ

SGSEAYQGVQQKWDATATELNNALQ

TATELNNALQNLARTISEAGQAMAS

NLARTISEAGQAMASTEGNVTGMFA

ESAT-6: 7 overlapping peptide sequences

CFP-10: 6 overlapping peptide sequences

10

T Cells produce IFN-in response to TB infection

11

Mesure de l'IFN-Ȗ

• Littérature démontrant le rôle important de l'IFN-Ȗdans l'infection tuberculeuse • La production d'IFN-témoigne de la réponse cellulaire médiée en particulier par les lymphocytes T lorsqu'ils sont stimulés par des antigènes • Sécrété, mesurable et stable • Dans la plupart des cas, absent de la circulation

IGRAs TESTS commerciaux

13 -PanelA:ESAT-6 -PanelB:CFP-10

T SPOT-TB

(Oxford Immunotec)

Expression des résultats

Validation du test

Control négatif <10spots

Control positif > 20spots

Réponse spécifique positive

( Antigène - négatif) >6spots au moins égale à 2 fois le témoin négatif

Réponse indéterminée

Contrôle négatif >10spots

Contrôle positif < 20spots

15

5. Calcul et ilmpréssion

des résultats4. Lavage puis addition du substrat.Lecture des DO après

30mn.3. Plasma

+conjugué.

Incubation 2H

à température

ambiante.

1. 1mL de sang (X3) et

incubation à 37ºC pdt 16-24 h.2. Centrifugation pdt

15 minutes.

IFN-stable à 4°

pdt au moins 8 semaines.

Etape 1: incubation sur sang total hépariné

Etape 2: Dosage ELISA de l'

IFN-

ESAT-6CFP-10

L'étape ELISA est facilement automatisable sur les appareils existants au laboratoire.

QuantiFERON®-TB Gold IT

NilControl

Mitogen

Control

16 17 Tube négatif seuil <8 UI/ml Tube positif différence entre positif et négatif > 0,5UI/ml Tube Ag TB différence entre TB et négatif < 0,35 UI/ml

Test négatif

Résultats du test

Tube négatif seuil <8 UI/ml Tube positif différence entre positif et négatif > 0,5UI/ml Tube Ag TB différence entre TB et négatif > 0,35 UI/ml Infection probable à Mycobactérie du complexe tuberculosis

Tests indéterminés

-Tube négatif seuil >8 UI/ml -Tube positif différence entre positif et négatif < 0,5UI/ml Tube Ag TB différence entre TB et négatif < 0,35 UI/ml 19 20 Tube mitogène et résultats indéterminés • Contrôle Mitogène: concentration faible -Indication de la compétence immunitaire du patient. -Validation de la conservation des prélèvements avant incubation et de la manipulation. • Résultat indéterminé: (i-e pas de réponse sur tube Mitogène): -Riche d'enseignement - ce n'est pas seulement un contrôle positif. 21

IFN-Ȗtube mitogène vs taux de CD4

Correlation between CD-4 cell

count and response to PHA 0-99 1

00-199

2

00-300

300
0.01 0.1 1 10 100

CD 4 cell count (cells/microliter)

Log 10 Response to

mitogen (IU/ml)

Notre expérience sur 6 mois

162 tests ont été réalisés:

156 patients

-110 négatifs (70,5%) 2 patients ont été contrôlés -35 positifs (22,4%) 2 patients ont été contrôlés -11 indéterminés (7%) 1 patiente revue 3 fois

CONCLUSION (1)

Mise en oeuvre des 2 tests

T SPOT -TB

réservé à des laboratoires faisant de la culture cellulaire, nécessité de la prise en charge tout de suite de l'analyse du début jusqu'à la fin de la révélation

QFT gold IT

réalisation pratique possibilité d'accumuler les

échantillons

ne nécessitant pas de matériel dédié 24

Pédiat.0,62

Adult.0,920,88TB active0,92totalitéT-Spot.TB0,96vac.1non vac.Pédiat.0,66 Adult.0,760,76TB active0,97totalitéQFT-TB Gold0,56vac.0,98non vac.Pédiat.0,55 Adult.0,730,71TB active0,66totalitéIDRSensibilité (95% IC)Spécificité (95% IC)

D. Menzies et al Ann Intern Med 2007

CONCLUSION (2)

Comparaison IDR et tests IGRA

25

Predictive value of a whole blood IFN-g assay

for development of active TB disease ( R. Diel et al 2008) - 601 personnes exposées à des sujets ayant une TB active suivi 2ans

IDR + > à 5mm : 243/601 (40,4%)

QFT + : 66/601 ( 11%)

- Sujets ayant refusé le TRT et développant une TB active

QFT+ (41/66) 6 sujets (14,6%)

IDR+ (219/ 243) 5 sujets (2,5%)

IDR- 1 sujet

Les attentes

Une évaluation multicentrique des 2 tests commercialisés à l'heure actuelle: sensibilité, spécificité - dans l'infection tuberculeuse latente -dans le suivi de l'efficacité du traitement anti-tuberculeux

Une évaluation de ces tests en pédiatrie

27
• 142 patients sous divers traitements incluant anti-TNF-Į, corticoïdes... • 8/142 (6%) avec un résultat indéterminé en QFT • Réactivité vis à vis du Mitogène chez patients sous différents traitements: - Faible réponse d' IFN-Ȗsous traitement anti TNF(Infliximab) - D'autres traitements n'ont pas ou peu d'effet - BCG uniquement associé avec IDR positive

Résultat du QFT-Gold chez patients sous

traitement immunosuppresseur Matulis et al. American College of Rheumatology, San Diego, CA. November 2005 28
Comparaison entre IDR et QFT-TB Gold dans les maladies rhumatismales B. Soborg et al, ACR 2007

Cohorte 198 patients sous DMARD et /ou anti-TNF

étude sur 2 ans

1indpos

8indneg1+10 (5%)pospos9 (5%)posneg37 (19%)negpos5+133 (67%)negnegRadiol.PatientsQFTIDR

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