1 Dossier : La catalyse hybride une synergie puissante entre
observée entre catalyseurs chimiques et biologiques les premiers étant un substrat différent de ceux habituellement transformés par l'enzyme.
Principaux processus physico-chimiques et biologiques intervenant
As the water percolates through the soil different chemical
Dégradation bio-physico-chimique des élastomères silicones
dégradation biologique : ainsi les catalyseurs organométalliques testés 1.3.4 - Lien entre caractéristiques physico-chimiques et propriétés d'usages .
Etude de la dégradation biologique et chimique dun pesticide
Définition des termes employés pour décrire la transformation observée au Genoscope Figure 23 : Structure chimique des catalyseurs utilisés dans les ...
DUN SOLVANT EFFET DUN CATALYSEUR
Faire la différence entre les divers types de catalyse luants qu'ils soient biologiques ou chimiques ? POUR BIEN DÉMARRER !
Les enzymes sont des protéines douées dune activité biologique
Il existe également des catalyseurs chimiques (acides certains métaux
A la frontière de la chimie et de la biologie : biocatalyse et catalyse
3 sept. 2012 Ses travaux se situent à l'interface entre la chimie et la biologie en particulier dans le domaine de la catalyse bio-inspirée
Catalyse en synthèse organique: valorisation dun biocatalyseur
26 févr. 2014 ECOLE DOCTORALE SANTÉ SCIENCES BIOLOGIQUES ET CHIMIE DU VIVANT ... Comparaison entre nos catalyseurs et différents systèmes catalytiques ...
TP09 – Les enzymes des catalyseurs biologiques
vitesse d'une réaction chimique. De plus beaucoup d'enzymes ont une activité Chapitre 4 : Les enzymes
Les produits chimiques dans lagriculture
chimiques artificiels comme engrais comme insecticides ou herbicides et comme régulateurs de sort des molécules complexes dans les tissus biologiques
Fiche explicative de la leçon : Les catalyseurs Nagwa
Dossier : La catalyse hybride une synergie puissante entre catalyses chimique et biologique Hybrid catalysis a powerful synergy between chemo- and bio-catalysis Partie 1/4 : La catalyse la diversité au service de l’efficacité Part 1/4: Catalysis diversity at the service of efficiency
Quelle est la différence entre un catalyseur et une enzyme ?
Les fabricants de produits chimiques utilisent donc souvent des catalyseurs pour accélérer la vitesse des réactions, alors que les cellules dans les organismes vivants utilisent des catalyseurs biologiques appelés enzymes, pour faire de même.
Quels sont les différents types de catalyseurs ?
Les types courants de catalyseurs incluent les enzymes, les catalyseurs acido-basiques et les catalyseurs hétérogènes (ou de surface ). Ton cerveau est alimenté par l'oxydation du glucose. Cette oxydation peut être représentée par l'équation chimique équilibrée suivante : Sans cette réaction, apprendre la chimie serait beaucoup plus difficile.
Qu'est-ce que la catalyse hétérogène ?
Il agit comme catalyseur, et on l'indique au-dessus de la flèche, pas dans les réactifs ou les produits de la réaction. On parle de catalyse hétérogène si le catalyseur et les réactifs ne sont pas dans la même phase. Par exemple, le catalyseur est solide et les réactifs sont liquides ou gazeux.
Quels sont les avantages des catalyseurs ?
Nous pouvons d’abord identifier les affirmations qui sont des avantages, puis les éliminer. L’utilisation de catalyseurs dans des processus industriels présente plusieurs avantages. En premier lieu, les catalyseurs accélèrent la vitesse des réactions chimiques, ce qui permet d’obtenir des produits plus rapidement.
Etude de la dégradation
pesticide persistant : la chlordécone Thèse de doctorat de l'Université Paris-Saclay préparée au Genoscope École doctorale n°577 Structure et Dynamique des SystèmesVivants (SDSV)
Spécialité de doctorat : Sciences de la Vie et de la SantéChimie analytique
Thèse présentée et soutenue à Evry, le 17 novembre 2017, parMarion Chevallier
Composition du Jury :
Magalie Jannoyer-Lesueur
Directrice de Recherches, CIRAD, Montpellier PrésidenteHélène Budzinski
Directrice de Recherches CNRS, Université de Bordeaux RapporteureGwenaël Imfeld
Chargé de Recherches, Université de Strasbourg RapporteurWilliam Buchmann
Examinateur
Elizabeth Edwards
Professeur, Université de Toronto ExaminatriceDenis Le Paslier
Directeur de Recherches, CNRS-Genoscope (UMR 8030) Directeur de thèsePierre-Loïc Saaidi
Maître de Conférences, Co-encadrant de thèseNuméro National de Thèse (NNT)
: 2017SACLE033 2 3Remerciements
environnementale quand je suis arrivée au Genoscope. sympathie. Merci à Hélène Budzinski, Gwenaël Imfeld, William Buchmann, Elizabeth Edwards et Magalie discussions au cours de la soutenance.Sébastien, Agnès, Nuria, Delphine, Edgardo et Loïc, pour faire avancer le projet à mes côtés et
Lorenz Adrian, Myriel Cooper, Steffen Kümmel, Hans Richnow, nos collaborateurs de Leipzig travailler à nouveau rapidement avec vous.manipulations avec la chlordécone radioactive, et qui se sont montrés disponibles et attentifs à mes
travaux. Sophie Peulon, pour mes premiers pas en électrochimie. Merci aussi pour ton écoute et tes conseils.Merci à Florian, Eddy, Grégoire et Tiphanie, stagiaires sur le projet chlordécone qui se sont
Merci à tous mes collègues : Ombeline, Katia, Thomas Be., Pascal, Christine, Cécile, Nadia,Tiffany, Lucille, Tristan, Marion, Jean-Louis, Oriane, Chloé, Nathalie, Peggy, Emilie, Gabor, Anne Z.,
Carine, Volker, Madeleine, Anne B., Laurence, Thomas Br., Christophe, Sophia, Olexei, Sawsan, Ghani, si agréable. Enfin, merci à Myke, Elise, Marvin, Lucie, Minh, Odilon, mes parents, ma famille et mes amis, 4 5Sommaire
REMERCIEMENTS 3
SOMMAIRE 5
LISTE DES ABREVIATIONS 13
LISTE DES FIGURES 15
LISTE DES TABLEAUX 29
INTRODUCTION 31
CHAPITRE 1 ǣǯ : CONTEXTE ENVIRONNEMENTAL DE LA POLLUTION A LA CHLORDECONE DANS LES ANTILLES FRANÇAISES 33Introduction 34
I. Présentation de la molécule 35
A. Propriétés chimiques 35
B. Equilibres impliquant la chlordécone 35
C. Détection et dosage 36
D. Voie de synthèse 37
II. Historique de la chlordécone 38
A. Utilisation de la chlordécone, du Mirex® et du Kelevan comme pesticides 38D. Conséquences socio-économiques de la pollution à la chlordécone des Antilles françaises 39
III. Contamination environnementale à la chlordécone 40B. Contamination de la chaîne alimentaire 42
IV. Toxicité : dangers connus ou suspectés et mécanismes associés 44 A. Métabolisme et toxicocinétique de la chlordécone 44 6B. Dangers connus et suspectés 45
A. Dégradation microbiologique de la chlordécone 47 B. Transformation chimique de la chlordécone 48 C. Transformation thermique de la chlordécone 52 D. Toxicité des produits de transformation 53E. Dégradation chimique du Mirex 54
VI. Perspectives pour la transformation chimique de la chlordécone 54 A. Présentation des complexes métalliques décrits dans les transformations chimiques de polluants organochlorés 55 organiques chlorés : travaux antérieurs 57VII. Conclusions et objectifs de la thèse 58
CHAPITRE 2 : TRANSFORMATION TOTALE DE LA CHLORDECONE PAR VOIE MICROBIOLOGIQUE, ISOLEMENT DE CONSORTIA BACTERIENS ET DE SOUCHES DE CITROBACTER ET ANALYSE DES METABOLITES PAR SPECTROMETRIE DE MASSE 63Introduction 64
A. Recherche de bactéries dégradant la chlordécone 65 C. Isolement de bactéries du genre Citrobacter transformant la chlordécone 66II. Définition des termes employés pour décrire la transformation observée au Genoscope 68
III. Etude des métabolites par couplage chromatographie-spectrométrie de masse 69 A. Détermination des formules brutes par LC-Orbitrap-MS 71 (famille C) 72 IV. Etude des métabolites par spectrophotométrie 84A. Absorption des métabolites apolaires 84
B. Absorption des métabolites polaires 86
Conclusion 88
7 CHAPITRE 3 : TRANSFORMATIONS PAR VOIE MICROBIOLOGIQUE DE LA CHLORDECONE : PURIFICATION DES PRINCIPAUX METABOLITES 89Introduction 90
transformation microbiologique de la chlordécone 91 B. Suivi de la concentration des ions chlorures dans le milieu au cours de la transformation microbiologique de la chlordécone 93 II. Purification des métabolites majoritaires détectés dans le milieu réactionnel 96A. Extraction des métabolites 96
B. Etude préliminaire de la séparation des métabolites par chromatographie sur couche mince 97
C. Séparation des métabolites apolaires des autres familles de métabolites 98 D. Deuxième étape de purification par chromatographie en phase inverse 99 E. Extrapolation des proportions des métabolites par comparant les signaux des chromatogrammes (LC-MS et GC-MS) en fin de transformation 105Conclusion 107
CHAPITRE 4 : PRODUCTION PAR VOIE CHIMIQUE ET PURIFICATION DESPRODUITS DE TRANSFORMATION DE LA CHLORDECONE 109
Introduction 110
I. Synthèse chimique des différentes familles de métabolites : criblage des conditions de réaction
111précédemment décrites 111
B. Criblage des conditions réactionnelles 112
II. Production et purifications des composés de la famille A 114 A. Conditions favorisant la production du monohydrochlordécone A1 114C. Extraction des hydrochlordécones 126
D. Purification par phase normale 126
E. Purification par phase inverse 126
F. Purification finale 127
8 III. Production et purification des composés de la famille B 128 B. Montée en échelle pour la production sélective des polychloroindènes 129C. Extraction des polychloroindènes 130
D. Séparation par HPLC préparative 131
E. Purification finale 133
IV. Production et purification des composés de la famille C 133 B. Conversion de la chlordécone en composés polaires à grande échelle 133C. Extraction des composés polaires 135
D. Séparation des composés polaires 135
E. Purification finale 136
Conclusion 137
CHAPITRE 5 : ELUCIDATION STRUCTURALE DES COMPOSES OBSERVES AU COURS DES TRANSFORMATIONS MICROBIOLOGIQUES ET CHIMIQUES DE LACHLORDECONE 139
Introduction 140
I. Elucidation structurale complète des hydrochlordécones : attribuer la position des atomes A. Elucidation structurale du métabolite A1 141 B. Confirmation de la structure 8-monohydrochlordécone pour le métabolite A2 144 C. Elucidation structurale du métabolite A3 147D. Equivalence des spins dans les molécules qui présentent un élément de symétrie 148
II. Elucidation structurale des polychloroindènes 149 A. Etude par RMN des chloroindènes : placement des atomes de chlore et des protons du métabolite B1 149 B. Elucidation structurale du métabolite B2 157C. Elucidation structurale du composé B3 160
III. Elucidation structurale des composés de la famille C 165 A. Elucidation structurale des métabolites C1 et C2 166 B. Elucidation structurale du métabolite C3 et C4 171 C. Elucidation structurale du métabolite C5 et C6 174 D. Elucidation structurale des métabolites C7 et C8 175 9E. Position de la fonction acide carboxylique sur la structure indène pour les composés Ci avec i =
1 à 8 178
Conclusion 181
CHAPITRE 6 : ETUDE DES VOIES DE TRANSFORMATIONS
MICROBIOLOGIQUES ET CHIMIQUES DE LA CHLORDECONE 183Introduction 184
I. Rôle des catalyseurs et des agents réducteurs au cours des transformations chimiques de la chlordécone 185A. Catalyseurs chimiques 185
II. Place des métabolites au cours des transformations microbiologiques et chimiques de la chlordécone 202 A. Etude de la distribution isotopique des métabolites produits à partir de la chlordécone marquée au carbone 13C 202 B. Transformation microbiologiques et chimiques des métabolites isolés 211 C. Discussion des voies de transformation de la chlordécone par voie microbiologique 217Conclusion 219
CHAPITRE 7 : ETUDE DU FRACTIONNEMENT ISOTOPIQUE AU COURS DES TRANSFORMATIONS PAR VOIE MICROBIOLOGIQUES ET CHIMIQUES DE LACHLORDECONE 221
Introduction 222
Résumé 224
Conclusion 229
Article soumis à Environmental Science and Technology 230CHAPITRE 8 : MATERIEL ET METHODES 254
I. Protocoles généraux et équipements 255 10A. Généralités 255
II. Expériences microbiologiques et chimiques 263A. Expériences de transformation de la chlordécone et de ses métabolites à petite échelle (de 0,5
à 5 mg de chlordécone ou métabolite engagés) 263B. Expériences à grande échelle (de 5,0 mg à de chlordécone ou de métabolites engagés) 270
III. Purifications 272
A. Purification du métabolite B1 depuis la culture microbiologique (consortium 86) 272 B. Purification des métabolites C1 et C2 depuis la culture microbiologique (consortium) 273 C. Purification du métabolite A1 depuis la transformation par voie chimique de la chlordécone avec la vitamine B12 et le sulfure de sodium 274 D. Purification des métabolites A2 et A3 depuis la transformation par voie photochimique de la chlordécone 275 E. Purification des métabolites B1, B2 et B3 depuis la transformation par voie chimique de la chlordécone avec la vitamine B12 et le citrate de titane (III) 276 F. Purification du métabolite 13C-B1 issu de la transformation par voie chimique de la 13C- chlordécone avec la vitamine B12 et le citrate de titane(III) 277G. Purification des métabolites Ci (i = 1 à 4) et des composés Cj (j = 5 à 8) depuis la transformation
par voie chimique de la chlordécone avec la vitamine B12 et le fer zéro valent 278 IV. Analyses structurales des métabolites et produits de transformation 279 B. Analyses structurales par résonance magnétique nucléaire 279 VI. Montage électrochimique pour les suivis de potentiel 281CONCLUSIONS ET PERSPECTIVES 284
I. Etude des métabolites issus des transformations microbiologiques et chimiques de la chlordécone 284 II. Etude des voies de transformations microbiologiques et chimiques de la chlordécone 286 III. Dosage de la chlordécone, de ses métabolites et perspectives environnementales 288POUR VOUS FAIRE UN Dǥ 292
11BIBLIOGRAPHIE 294
ANNEXES 308
12 13Liste des abréviations
APCIC : Acide PolyChloroIndène Carboxylique
BRGM : Bureau des Ressources Géologiques et Minières CID : Collision Induced Dissociation (Dissociation Induite par Collision)CLD : Chlordécone
CNRS : Centre National de la Recherche ScientifiqueDCM : DiChloroMéthane
DEDL : Détecteur Evaporatif à Diffusion de la LumièreEI : Electronic Impact (Impact Electronique)
éq. : equivalent molaire
ESI : ElectroSpray Ionisation (Ionisation par ElectroSpray) FID : Flame Ionization Detector (Détecteur à Ionisateur de Flamme) FWHM : Full Width at Half Maximum (Largeur à Mi-Hauteur) GC : Gas Chromatography (Chromatographie en Phase Gazeuse) HPLC : Chromatographie Liquide à Haute Pression/PerformanceIR : Infra Rouge
IRMS : Isotope Ratio Mass Spectrometry (Spectrométrie de Masse de Rapport Isotopique) ISCR : In Situ Chemical Reduction (Réduction Chimique In Situ) LC : Liquid Chromatography (Chromatographie en Phase Liquide) MALDI : Matrix-Assisted Laser Desorbtion IonisationMS : Mass Specrometry (Spectrométrie de Masse)
NIRS : Near Infra Red Spectroscopy (Spectroscopie de Réflectance dans le Proche Infra-Rouge)OMS : Organisation Mondiale de la Santé
PCI : Polychloroindène
POP : Polluant Organique Persistant
RMN : Résonance Magnétique Nucléaire
SAU : Surface Agricole Utile
TOF : Time Of Flight (Temps de Vol)
14UMR : Unité Mixte de Recherche
UV : Ultra Violet
15Liste des figures
Figure 2 : Structure chimique de la chlordécone (C10Cl10O) anhydre. ............................................................. 35
Figure 5 : Voie de synthèse simplifiée de la chlordécone (Epstein, 1978). ...................................................... 37
Figure 6 : Charançon du bananier (Cosmopolites sordidus) (Photographie de D. Martire). ............................. 38
Figure 7 : Structure du Mirex (a) et du Kelevan (b). ...................................................................................... 38
Figure 8 : Cartographie de la présence de chlordécone dans les sols de Guadeloupe (a) et de Martinique
(Cabidoche & Lesueur-Jannoyer, 2011). ............................................................................................... 41
pour Basse-Terre, Guadeloupe (Cabidoche & Lesueur-Jannoyer, 2011). ................................................ 42
Figure 10 : Classification des cultures selon leur sensibilité à la contamination par la chlordécone (Jannoyer-
Lesueur, 2017). .................................................................................................................................... 44
Figure 11 : Métabolisation de la chlordécone dans le foie humain. ............................................................... 45
Figure 12 : Métabolisation probable de la chlordécone dans le foie (Fariss et al., 1980). ............................... 45
Figure 13: Réduction de (a) la chlordécone en chlordécol avec NaBH4 (Fariss et al., 1982) et (b) des dérivés
mono- et dihydrochlordécone en (respectivement) mono- et dihydrochlordécol avec Zn(BH4)2 (Fariss et
al., 1982). ............................................................................................................................................ 49
Figure 14 : Mécanisme simplifié de la réduction thermique de Meerwein-Ponndorf-Verley (tiré et adapté de
(Soine et al., 1983)) ............................................................................................................................. 49
Figure 15 : Réduction et déchloration complète de la chlordécone (tiré et adapté de (Dilling et al., 1967)) ... 50
Figure 16 : Réarrangement de Favorskii (tiré et adapté de (Scherer et al., 1966)). ......................................... 50
Figure 17 : Ouverture de la structure bishomocubane du Mirex (Dilling et al, 1967). ..................................... 50
Figure 18 : Structures hydrochlordécone (a) et chloroindène (b). .................................................................. 51
Figure 19 : Etapes proposées pour la formation des chloroindènes depuis la structure cage de la chlordécone
(tiré et adapté de (Schrauzer & Katz, 1978)). ........................................................................................ 52
Figure 21 : Structure chimique des noyaux (a) pyrrole, (b) 1-pyrroline, (c) corrine, présents dans les structures
dans les chlorophylles. ........................................................................................................................ 55
Figure 22 : Ligands axiaux possibles du cobalt et dénomination de la cobalamine (vitamine B12) en fonction du
ligand. ................................................................................................................................................. 55
Figure 23 : Structure chimique des catalyseurs utilisés dans les réactions chimiques de transformation de la
chlordécone (a) vitamine B12, (b) hématine et (c) chlorophylle a. R pouvant être chacun desgroupements présentés en Figure 22. .................................................................................................. 56
16Figure 24 : Différents mécanismes de réduction du tétrachlorure de carbone proposés en présence de citrate
de titane(III) et de vitamine B12 (tiré et adapté de (Lewis et al., 1996)).................................................. 57
Figure 25 : Etudes abordées dans la thèse et chapitres associés. ................................................................... 61
Figure 26 : Suivi en GC-MS au cours du temps de la transformation de la chlordécone en anaérobiose en
présence du consortium bactérien 86 (tiré et adapté de Chaussonnerie et al., 2016). ........................... 66
Figure 27 : Suivi en LC-MS au cours du temps de la transformation de la chlordécone en anaérobiose en
présence du consortium bactérien 86. ................................................................................................. 66
moléculaire est indiqué en vert. .......................................................................................................... 72
Figure 29 : Analyse du massif isotopique compris entre m/z 270 et 278. ....................................................... 73
Figure 32 : (a) Plan de symétrie transversal et (b) longitudinal de la chlordécone déshydratée. .................... 74
est numéroté selon la nomenclature IUPAC de la chlordécone (Figure 34). Le 8оmonohydrochlordécone
est une molécule chirale. ..................................................................................................................... 75
Figure 34 : Nomenclature IUPAC de la CLD. .................................................................................................. 75
Figure 35 : Fragmentation caractéristique des monohydrochlordécones. ...................................................... 75
Figure 36 : Spectre de masse du métabolite A1 (GC-EI-MS mode positif). Les ions fragments utiles à
Figure 37 : Structures chimiques possibles pour le métabolite A1. ................................................................ 76
Figure 38 : Spectre de masse du métabolite A2 (GC-EI-MS en mode positif). Les ions fragments utiles à
Figure 39 : Structure chimique du métabolite A2. ......................................................................................... 77
Figure 40 : Spectre de masse du métabolite A3 (GC-EI-MS en mode positif). Les ions fragments utiles à
Figure 41 : Structures chimiques possibles pour le métabolite A3. ................................................................ 79
Figure 42 : Spectre de masse du métabolite A4 (GC-EI-MS en mode positif). Les ions fragments utiles à
Figure 43 : Structures chimiques possibles pour le métabolite A4. ................................................................ 80
Figure 44 : Spectre de masse du métabolite A5 (GC-EI-MS en mode positif). Les ions fragments utiles à
Figure 45 : Structures chimiques possibles pour le métabolite A5. ................................................................ 80
Figure 46 : Spectre de masse du métabolite B1 (GC-EI-MS en mode positif). ................................................. 81
Figure 47 : Spectre de masse du métabolite B2 (GC-EI-MS en mode positif). ................................................. 81
Figure 48 : Spectre de masse du métabolite B3 (GC-EI-MS en mode positif). ................................................. 81
Figure 50 : Spectre de masse du métabolite C1 par ionisation en électrospray (ESI). ..................................... 83
17Figure 51 : Spectre de masse du métabolite C2 par ionisation en électrospray (ESI). ..................................... 83
Figure 52 : Spectre de masse du métabolite C3 par ionisation en électrospray (ESI). ..................................... 83
Figure 53 : Spectre de masse du métabolite C4 par ionisation en électrospray (ESI). ..................................... 83
Figure 54 : Profil chromatographique des composés C1, C2, C3 et C4 en LC-MS avec détail du profil
chromatographique de chaque ion observé dans le spectre de masse du composé ([M-H]-, [M-H-CO2]- et
[M-H-CO2-HCl]-. ................................................................................................................................... 84
Figure 56 : Structure indène. ........................................................................................................................ 86
Figure 57 : Structure pentachloroindène proposée pour le métabolite B1 (a) et tétrachloroindène proposée
pour les métabolites B2 et B3 (b). ........................................................................................................ 86
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