[PDF] Objet : Administrations et injections chez le porc Numéro : AD-10

View - Download Objet : Administrations et injections chez le porc Numéro : AD-10

Previous PDF

Next PDF

1

Direction des services vétérinaires Procédure normalisée de fonctionnement

Objet : Administrations et injections chez le porc Numéro : AD-10

Portée : Ceci est une directive de la Direction des services vétérinaires à l'intention des

utilisateurs et du personnel des animaleries de l'Université Laval et des centres de recherche affiliés.

Préparée par Daphnée Veilleux-Lemieux

Vétérinaire responsable, Direction des services vétérinaires Date : 22 septembre 2015

Révisée par Anne-Marie Catudal

Vétérinaire clinicienne, Direction des services vétérinaires Date : 2 octobre 2015 But : DĠcrire les procĠdures d'administrations et d'injections de substances chez le porc. Version 1

Généralités

Un anesthésique local approuvé par un vétérinaire peut être appliqué pour prévenir la douleur reliée à une injection.

L'identification de l'animal doit être vérifiée et l'Ġtat gĠnĠral de l'animal observé

avant de commencer. Toute anomalie observée doit être notée. l'analyse des rĠsultats et de s'assurer de ne pas administrer une surdose ou une sous-dose. Toute substance administrée de façon parentérale doit être stérile et devrait être isotonique et de pH physiologique. Toute substance administrée devrait être amenée à température de la pièce avant l'administration. Si un grand volume est administré, le produit peut être réchauffé sur un tapis chauffant ou dans un bain-marie afin d'Ġǀiter la diminution de la température corporelle lors de l'administration. Le nombre d'injections par jour devrait être limité à trois pour la voie sous- cutanée.

Le nombre d'injection par jour deǀrait ġtre limitĠ ă deudž pour les ǀoies

intramusculaires, intraveineuses, intrapéritonéales et intranasales. L'embout du contenant dans lequel le produit à administrer est conservé doit toujours ġtre nettoyĠ aǀec de l'alcool avant de prendre la dose à injecter. La seringue doit être remplie aǀec le ǀolume appropriĠ et les bulles d'air prĠsentes doivent être éliminées. 2 d'une personne edžpĠrimentĠe doit ġtre demandĠe. Si le produit administrĠ s'Ġcoule du site pendant ou aprğs l'administration, noter lors de l'analyse des rĠsultats. Les seringues et aiguilles utilisées doivent être disposées immédiatement dans un contenant biorisque pour objets piquants et tranchants, sans avoir remis le capuchon. L'aiguille doit être changée entre chaque animal afin d'éviter la contamination croisée. De plus, les aiguilles de petits calibres s'usent trğs rapidement (aprğs une seule insertion dans la peau) et sont donc moins efficaces pour percer la peau sans blesser par la suite (voir image ci-dessous). Source : http://www.caninediabetes.org/pdorg/bd_needle.htm

Définitions

Parentéral ͗ administration de substances ă l'edžtĠrieur du tractus gastro-intestinal Isotonique : solution contenant la même concentration de solutés que le sang

SC : sous-cutané

IM : intramusculaire

IV : intraveineux

PO : per os (oral)

3

Procédures

Choisir la grosseur d'aiguille (G) appropriée selon le site d'injection :

SC IM IV

18-21 18-21 19-21

Respecter les limites ci-dessous pour le volume à administrer : PO (ml/kg) SC (ml/kg) IM (ml/kg) IV bolus (ml/kg) a

Volume

idéal 10 1 b 0,25 2,5 a bolus ͗ l'administration du produit est effectuĠe rapidement, entre 30 secondes et 1 minute.

b le volume de fluide injecté sous-cutanĠ lors d'une procĠdure d'anesthĠsie ou suite ă un

prélèvement sanguin diffère. Les fluides seront alors administrés à raison de 10 ml/kg/heure lors

de l'anesthĠsie et selon la PNF P-16 lors des prélèvements sanguins.

Gavage (PO)

Utiliser un tube à gavage de grosseur 16 à 24 Fr. l'animal. Choisir une longueur de tube appropriée ou marquer le tube avec crayon non

90 °.

Mouiller le tube pour faciliter l'insertion.

tousse, recommencer. Plonger l'embout du tube dans un rĠcipient d'eau et ǀĠrifier l'absence de bulle pendant au moins 3 respirations. Si des bulles sont observées au même moment que l'animal edžpire, recommencer du début. recommencer du début. Administrer le reste de la substance et rincer le tube aǀec de l'eau. Retirer le tube en le repliant (pour éviter que du liquide tombe dans la trachée en ressortant le tube). 4

Injection sous-cutanée (SC)

Si possible, faire les injections sous-cutanées entre les omoplates. Pincer et soulever la peau du site visé pour former une tente avec la peau. Insérer une aiguille biseau vers le haut, à la base de la tente, parallèlement à l'animal. Soutirer et ǀĠrifier l'absence de sang ou d'air; si du sang ou de l'air apparaît, retirer l'aiguille et recommencer. Une rotation des sites peut être faite lorsque plusieurs injections sous-cutanées doivent être régulièrement effectuées. Injection intramusculaire (IM) lombaire (site à privilégier) Palper la colonne vertébrale au niveau lombaire et localiser les muscles lombaires qui se trouvent de chaque côté de celle-ci. Isoler le muscle puis insĠrer l'aiguille aǀec un angle d'enǀiron 45 °, biseau vers le haut.

Soutirer et ǀĠrifier l'absence de sang; si du sang apparaŠt, retirer l'aiguille et

recommencer.

Se limiter à une injection par côté.

Ne pas utiliser plus de 2 sites intramusculaires par jour.

Injection intramusculaire (IM) (site alternatif)

Isoler le muscle postérieur de la cuisse.

Dans un angle de 30 °, insérer une aiguille caudalement biseau vers le haut dans le muscle de la cuisse.

Soutirer et ǀĠrifier l'absence de sang; si du sang apparaŠt, retirer l'aiguille et

recommencer.

Se limiter à une injection par cuisse.

Ne pas utiliser plus de 2 sites intramusculaires par jour. 5

Injection intraveineuse (IV)

Utiliser la veine céphalique ou saphène.

Contentionner l'animal de faĕon sĠcuritaire afin de bien visualiser la veine.

Raser le site.

Nettoyer le site avec de la chlorhexidine 0,05 %.

Faire un garrot.

Commencer le plus bas possible afin de pouvoir recommencer plus haut en cas d'Ġchec. Dans un angle de 30 °, insérer une aiguille, biseau vers le haut, puis redresser l'aiguille une fois la peau transpercĠe afin d'atteindre la veine.

Soutirer et ǀĠrifier la prĠsence de sang. Si le sang n'apparaŠt pas, essayer de

replacer doucement l'aiguille et soutirer ă nouǀeau. gonflement, ni de résistance. Maintenir le piston enfoncĠ et retirer l'aiguille. Arrêter le saignement au besoin, en effectuant une légère pression au site d'injection.

Références

Patricia V. Turner, Thea Brabb, Cynthia Pekow et Mary Ann Vasbinder, Adiministration of substances to laboratory animals : routes of administration and factors to consider, J Am Assoc Lab Anim Sci. 2011 Sep; 50(5): 600-613. Published online 2011 Sep. National center for the replacement, refinement and reduction of animal in research, Blood sampling microsite, consulté en juillet 2015. BVAAWF/FRAME/RSPCA/UFAW, Refining procedures for the administration of substances, 2001. John Wiley & Sons, Journal of applied toxicology 21, 2001. C Terrance Hawk, Steven L Leary, Timothy H Morris, Formulary for laboratory animals, 2005.
quotesdbs_dbs46.pdfusesText_46

[PDF] 2015 literature keystone sampler

[PDF] 2015 literature nobelist

[PDF] 2015 literature nobelist alexievich

[PDF] 2015 literature nobelist alexievich crossword

[PDF] 2015 loire blue range rover

[PDF] 2015 loire vintage

[PDF] 2015 lyon county free fair

[PDF] 2015 maths dse ans

[PDF] 2015 maths past papers

[PDF] 2015 movies

[PDF] 2015 nancy grace response to ohio shooting

[PDF] 2015 nancy meyers movie

[PDF] 2015 nc 700x review

[PDF] 2015 nc d400 instructions

[PDF] 2015 nc drivers license