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[PDF] SVT TB TP 35 - Développement embryonnaire des Amphibiens

identifier les différents stades du développement embryonnaire d'un amphibien à Vidéo Youtube 2003 « De l'œuf à la Grenouille » UPMC Paris 6 CNRS 



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Développement embryonnaire : de la fécondation jusqu'à la naissance ou têtard végétarien puis omnivore puis carnivore grenouille carnivore)

  • Quel est le développement embryonnaire de la grenouille ?

    Les cellules du blastocœle migrent vers le pôle animal, le blastopore se creuse et une nouvelle cavité se forme : l'archantéron ou cavité digesive. La formaion de cete cavité est le résultat de migraion cellulaire. La formaion de l'archantéron a lieu au niveau de la région dorsal de l'embryon.
  • Quels sont les étapes du développement embryonnaire ?

    Étapes

    Fécondation.Segmentation : de l'œuf à la morula.Blastulation.Nidation.Gastrulation.Délimitation de l'embryon.
  • Comment se fait la fécondation chez les amphibiens ?

    Le mâle va chevaucher la femelle en répandant son sperme au moment où les œufs sont pondus. La fécondation doit avoir lieu dès l'émission des ovocytes par la femelle. La gangue, hydrophile, gonfle au contact de l'eau et devient rapidement un obstacle à la pénétration des spermatozo?s (fécondation).
  • Au sein de la blastula apparaît une cavité de segmentation ou blastocèle. Le blastocoele est rempli de liquide, d'eau et de sels. La nature de l'œuf détermine le type de segmentation : le mode de segmentation est fonction de la quantité de réserves, vitellus que l'œuf aura accumulée pendant l'ovogenèse.
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Lycée Valentine Labbé (59) • Classe préparatoire TB • SVT • Partie 3 • TP 3.5. Développement embryonnaire des Amphibiens

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ENSEIGNEMENT DE SCIENCES DE LA VIE ET DE LA TERRE (SVT)

°° SCIENCES DE LA VIE °°

Partie 3. Reproduction des individus et pérennité des populations >> Travaux pratiques <<

TP 3.5.

Développement embryonnaire des

Amphibiens

Objectifs : extraits du programme Séance(s)

Connaissances clefs à construire, commentaires, capacités exigibles

Développement

embryonnaire d'un amphibien (1 séance) - identifier les différents stades du développement embryonnaire d'un amphibien à partir d'échantillons (embryons in toto, lames minces) et de clichés (microscopie optique, microscopie électronique)

Introduction

On appelle

développement ou ontogenèse l'ensemble des phénomènes permettant d'assurer la transformation d'un zygote en organisme adulte capable de se reproduire. Les Amphibiens sont caractérisés par un développement post- embryonnaire indirect mais seul le développement embryonnaire est au programme : la métamorphose et la croissance sont renvoyés à un niveau d'études ultérieur. Les

Amphibiens [Lissamphibia]

constituent une classe d'organismes Tétrapodes dont le développement a lieu (quasi-systématiquement) en milieu aquatique. L'essentiel des Amphibiens est groupé dans l'ensemble des

Batraciens

qui comprend deux sous-classes : les

Anoures

[Anura] dépourvus de queue (Grenouilles,

Crapauds) et les

Urodèles

avec une queue [Urodela]. Pour des raisons historiques mais aussi à cause de leur facilité d'élevage, les Amphibiens sont un modèle d'étude important du développement animal.

Le présent TP vient en application du

chapitre 17 sur le développement animal et aura pour objet d'étudier des clichés, des coupes microscopiques et du matériel frais d'Amphibiens au cours de leur développement embryonnaire.

Comment l'étude de clichés, de coupes microscopiques et de matériel frais permet-elle de reconstituer les principales étapes de ce développement ?

Sites Internet intéressants à consulter pour ce TP :

Site " Biologie et Multimédia » de l'Université Pierre et Marie Curie, Paris 6 (travail de

Michel D

ELARUE

, 2004) : [Page de sommaire] Nombreux clichés, nombreux schémas, animations...

Site " Biologie et Multimédia » de l'Université Pierre et Marie Curie, Paris 6 (version plus

ancienne, travail de C. A IMAR , 2000-2001) : [Page de sommaire : lien vers des clichés légendés]

Vidéo Youtube 2008 (développement embryonnaire en accéléré : de l'oeuf au têtard), 1 min

27 s, © Cytographics, J. & J. P

ICKETT

-H EAPS Vidéo Youtube 2003 " De l'oeuf à la Grenouille », UPMC, Paris 6, CNRS, Service du Film scientifique, 26 min 47 s (travail collectif) : https://www.youtube.com/watch?v=1NAt-OOSuKY Vraiment très clair, images réelles, clichés, animations, schémas... film complet !

Capacité exigible

 Identifier les les différents stades du développement embryonnaire

d'un amphibien à partir d'échantillons (embryons in toto, lames minces) et de clichés (microscopie optique,microscopie électronique).

Lycée Valentine L

ABBÉ

41 rue Paul D

OUMER - BP 20226

59563 L

A MADELEINE

CEDEX

CLASSE PRÉPARATOIRE

TB (Technologie & Biologie) Document téléchargeable sur le site https://www.svt-tanguy-jean.com/

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Support complété • Page 2

Activités du TP.

Étude pratique du développement embryonnaire des Amphibiens

Comment l'observation d'oeufs et d'embryons d'Amphibiens sous forme de clichés, lames et matériel

frais permet-elle de comprendre les étapes importantes de leur développement embryonnaire ? Savo irs

à construire

Développement embryonnaire des Amphibiens

Savoir-faire sollicités

Capacité ou attitude

visée

Évaluation

Maîtriser un outil, un geste technique, un logiciel

H Microscope

H Loupe binoculaire

H Dessin d'observation

Analyser, observer et

raisonner Travail à faire - Étudiez les supports concrets proposés à votre étude. - Légendez les figures proposées en utilisant l'ensemble des informations à votre disposition dans votre cours et le TP

- Produisez, sur des feuilles à part, des dessins d'observation des principales étapes du

développement des Amphibiens.

Matériel de TP

A. Matériel frais conservé en formaldéhyde à 3 % (travail sous hotte et avec gants) - Stade 1 cellule (avant ou après fécondation ? non précisé) - Stade 2 cellules - Stade 4 cellules ou 8 cellules - Stade gastrula ou jeune neurula - Stade bourrelet neural ou bourgeon caudal jeune - Stade jeune têtard B. Coupe microscopiques - Gastrula âgée - Neurula jeune - Neurula âgée - Bourgeon caudal jeune

I. Étude des gamètes et de la fécondation

On n"oubliera pas de revoir le TP consacré à la fécondation et à la gamétogenèse animales (

TP 3.1

A. Étude de l"ovocyte II et du zygote (= cellule-oeuf) Cette étude s'effectue ici uniquement sur des clichés ( figures 1-2

On complètera la

figure 1

FIGURE

1. Polarité pigmentaire des ovocytes d'Amphibiens et impact de la fécondation.

D'après S

EGARRA

et al. (2014)

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Support complété • Page 3

FIGURE

2. Tache de maturation dans l'ovocyte.

(novembre 2015) B. Étude électronographique des chromosomes en écouvillon de l"ovocyte en cours de maturation (ovocyte I)

FIGURE

3. Électronographie (MET) de chromosomes en écouvillon et son interprétation.

(octobre 2016)

Cette étude s'effectue ici sur cliché (

figures 3 - à compléter). Les chromosomes en

écouvillon

sont des chromosomes condensés au dtade diplotène de la méiose où des boucles sont localement décondensés et transcrites ( puffs chromomères actifs ), ce qui permet la synthèse d'ARNm dans l'ovocyte.

C. Étude micrographique du spermatozoïde

Cette étude s'effectue ici uniquement sur clichés ( figures 4-5 - à compléter). Les figures concernent des spermatozoïdes de Mammifères, plus faciles à trouver sur Internet et dans la littérature que les spermatozoïdes d'Amphibiens.

FIGURE

4. Électronographie (MEB) et micrographie (MO) d'un spermatozoïde de Mammifère.

et sciences/spermatozoide-3879 (octobre 2016)

FIGURE

5. Électronographie (MET) d'un spermatozoïde de Mammifère et son schéma

d'interprétation. (octobre 2016)

5 µm

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Support complété • Page 4

D. Étude électronographique du flagelle de spermatozoïde : organisation ultrastructurale de l"axonème

Cette étude s'effectue ici sur cliché (

figure 6 - à compléter). G

FIGURE

6. Électronographie (MET) au niveau de la pièce terminale du flagelle de

spermatozoïde et son interprétation montrant l'organisation d'un axonème eucaryote.

D'après C

AMPBELL

& REECE (2004). II. Étude pratique des principales étapes du développement embryonnaire A. Étude pratique de la segmentation Cette étude s'effectue ici à partir de supports concrets (lames, matériel frais) et sur clichés ( figures 7-8-9 ). On complètera les figures

FIGURE

7. Segmentation et blastula chez le Xénope : vue externe à la loupe.

D'après S

EGARRA

et al. (2014).

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FIGURE

8. Clichés de la segmentation (Xénope). D'après F

RANQUINET

& FOUCRIER (2003).

FIGURE

8bis. Clichés de la segmentation (Xénope). D'après B

EAUMONT

& CASSIER (1998).

Début de première division

(vue du pôle animal) Stade 2 cellules (vue du pôle animal)

Stade 4 cellules

(vue du pôle animal) Stade 8 cellules (vue latérale)

Morula

(vue latérale) Blastula (vue latérale)

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FIGURE

9. Étude microscopique (MO) d'une blastula en coupe transversale (Xénope).

D'après S

EGARRA

et al. (2014).

FIGURE

10. Blastula en coupe transversale (Grenouille rousse) : schéma d'interprétation.

D'après B

EAUMONT

& CASSIER (1998), adapté.

B. Étude pratique de la gastrulation

Cette étude s'effectue ici à partir de supports concrets (lames, matériel frais) et sur clichés ( figures 11-16 ). On complètera les figures

FIGURE

11. Clichés de gastrulas (Xénope). D'après F

RANQUINET

& FOUCRIER (2003).

FIGURE

12. Gastrulas en vue externe dorsale (Grenouille rousse) : croquis de divers stades.

D'après B

EAUMONT

& CASSIER (1998). Lèvre dorsale du blastopore Lèvre dorsale du blastopore

Bouchon vitellin

Anneau blastoporal

1 mm Encoche blastoporale

(vue dorsale) Fer à cheval (vue dorsale)

Bouchon vitellin

(vue dorsale)

Calotte

animale Zone marginale

Hémisphère

végétatif Blastocoele 1 mm

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FIGURE

13. Vue externes (essentiellement dorsales) et coupes sagittales de gastrulas

d'Amphibiens à divers stades (clichés obtenus au MEB).

D'après D

ARRIBÈRE

(2002).

FIGURE

14. Gastrulation. D'après S

EGARRA

et al. (2014).

Encoche

blastoporale Fer

à cheval

Bouchon

vitellin Fente blastoporale

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Support complété • Page 8

Coupe sagittale de gastrula âgée

FIGURE

15. Gastrulas en coupes sagittales (Grenouille rousse) : schémas d'interprétation.

D'après B

EAUMONT

& CASSIER (1998), adapté / modifié.

FIGURE

16. Coupe sagittale de gastrula (MO). D'après P

EYCRU et al. (2017). Ectoderme Mésoderme en migration Archentéron

Lèvre dorsale du blastopore

Endoderme

Bouchon vitellin

Lèvre ventrale du blastopore

Ectoderme

1 mm

Ectoderme

Mésoderme en migration Archentéron

Fente blastoporale

Endoderme

Blastocoele

Ectoderme

1 mm

Archentéron

Ectoderme

Mésoderme en migration

Fente blastoporale

Bouchon vitellin

Mésoderme Endoderme Blastocoele

Ectoderme

Archentéron

Blastocoele

Ectoderme

Mésoderme

Bouchon vitellin

Mésoderme Endoderme

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C. Étude pratique de la neurulation

Cette étude s'effectue ici à partir de supports concrets (lames, matériel frais) et sur clichés ( figures 17-22 ). On complètera les figures

FIGURE

17. Neurulation. D'après S

EGARRA

et al. (2014).

FIGURE

18. Clichés de neurulation (Xénope). D'après F

RANQUINET

& FOUCRIER (2003).

FIGURE

19. Neurulas (MEB) d'Amphibiens : stades divers. D'après P

EYCRU et al. (2017). (a) Plaque neurale (b) Bourrelets neuraux (c) Gouttière neurale (d) Tube nerveux

0,5 mm

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Milieu et fin de neurulation (vue dorsale)

FIGURE

20. Neurulas en vues externes (Grenouille rousse) : croquis. D'après B

EAUMONT

& CASSIERquotesdbs_dbs33.pdfusesText_39
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