[PDF] Echantillonnage de la végétation





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Peut-on estimer le nombre total despèces dun peuplement

30 nov. 2020 Il apparaît que l'aire minimale d'échantillonnage habituellement admise ne peut pas être déterminée malgré un nombre important de ...



Diapositive 1

1- Dimensions adéquates pour contenir un échantillon d'espèces représentatives de la communauté aire minimale. 2- Uniformité de l'habitat



Surface Minimale de relevés botaniques pour évaluer les services

4 avr. 2012 L'objectif de cette étude est rechercher l'aire minimale nécessaire pour faire un relevé botanique rapide ... d'échantillonnage. A l'opposé les ...



Annexe 6 --- Exemples pratiques pour aider à interpréter les

Ainsi pour un volume d'air échantillonné différent ou un décompte de la lame inférieur à 100 % la valeur minimale rapportée est différente (voir exemples 



Guide de terrain pour la réalisation des relevés phytosociologiques

L'aire minimale est la surface d'inventaire pour laquelle on estime qu'il est probable qu'elle contienne toutes les espèces de l'échantillon et donc que celui- 



IRSST – Guide déchantillonnage des contaminants de lair en

On retrouve dans cette colonne la valeur minimale rapportée (sur le dispositif d'échantillonnage) telle que définie dans la méthode. Toutefois dans 



Elaboration et mise en œuvre de méthodes déchantillonnage

En 2010 le CBNBl Picardie s'est inspiré de ce protocole pour définir un protocole standardisé



204-IJBCS-Article-Paul Noupa

l'écart entre l'aire minimale phytosocio- logique de l'étude et l'échantillonnage d'inventaire réalisé. Il se dégage que les relevés d'inventaires de la 



Cahier 4 : Échantillonnage des émissions atmosphériques en

✓ le débit d'échantillonnage minimal ou maximal de chacune des méthodes; de sources fixes DR-12-AIR-01



LA METHODE PHYTOSOCIOLOGIQUE SIGMATISTE OU BRAUN

de vérifier au cours de l'échantillonnage statistique de l'individu d'association que la surface retenue est située entre l'aire minimale et l'aire maximale 



Guide de terrain pour la réalisation des relevés phytosociologiques

L'aire minimale est la surface d'inventaire pour laquelle on estime qu'il est probable qu'elle contienne toutes les espèces de l'échantillon et donc que celui- 



Echantillonnage de la végétation

Choisir une stratégie d'échantillonnage. 2.3. Préparer la phase de terrain de taille croissante de déterminer l'aire minimale à inventorier ...



IRSST - Guide déchantillonnage des contaminants de lair en milieu

minimale de prélèvement doit tenir compte des contraintes analytiques de Dans le cas d'un orifice traditionnel l'aire de l'orifice est constante et la ...



COURS de MÉTHODES DÉTUDE ET DINVENTAIRE DE LA

La première partie du programme l'échantillonnage et ces principes généraux



Surface Minimale de relevés botaniques pour évaluer les services

2012/04/04 L'objectif de cette étude est rechercher l'aire minimale nécessaire ... a été estimée à l'aide d'un sous échantillonnage avec des quadrats.



Peut-on estimer le nombre total despèces dun peuplement

2020/11/30 l'aire minimale d'échantillonnage d'un peuplement correspond à l'idée selon laquelle un peuplement comporte - au moment de l'étude - un ...



Relations aire-espèces dans les jachères du périmètre de la réserve

Dans la pratique on définit classiquement l'aire minimale d'un indi- vidu d'association à partir de la courbe aire-espèces. L'accroissement du nombre d'espèces.



STRATÉGIE DÉCHANTILLONNAGE DES DONNÉES DE TERRAIN

unités d'échantillonnage comme une fonction de la résolution de l'image et de la variabilité du terrain. taille minimale de l'aire d'échantillonnage A :.



ENCLAVE CORALLIGENE DE LINFRALITTORAL DE KORBOUS

L'aire minimale qualitative est calculée d'après la relation qui existe entre le nombre des espèces échantillonnées et la superficie de cet échantillon.



Technique dÉchantillonnage et Analyse des Données

minimale d'observation à partir de laquelle on obtiendra de l'information sur les d'échantillonnage (cas des aires minimales pour les habitats).



lechantillonnage en phytoecologie : laire detude des communautes

28 août 2018 · Les courbes aire?espèces délimitent globalement une même surface minimale opérationnelle de 64 m² par la méthode de Braün? Blanquet (aire 



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1- Dimensions adéquates pour contenir un échantillon d'espèces représentatives de la communauté aire minimale 2- Uniformité de l'habitat le relevé ne 



137 - Définir les modalités de léchantillonnage

L'aire minimale (voir Figure n°26) peut être définie comme la plus petite surface qui rende compte d'une association végétale Pour la définir le 



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30 nov 2020 · Il apparaît que l'aire minimale d'échantillonnage habituellement admise ne peut pas être déterminée malgré un nombre important de prélèvements



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Détermination de l'aire minimale : L'emplacement des relevés dans chaque station théorique et le logarithme de richesse spécifique de l'échantillon 



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Un minimum de 10 transects de 200 m de long a été défini afin de pouvoir couvrir la zone de prospection et améliorer l'estimation Page 26 18 Tableau 2 : 



Chapitre 6 Les méthodes déchantillonnage et la détermination de

On peut dans ce cas estimer la représentativité de l'échantillon i e mesurer l'écart entre l'échantillon et la population Il existe plusieurs méthodes d' 



[PDF] Echantillonnage de la végétation - Jonathan Lenoir

Choisir une stratégie d'échantillonnage 2 3 Préparer la phase de terrain de taille croissante de déterminer l'aire minimale à inventorier 



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15 avr 2019 · De nombreuses organisations reconnues sont d'avis que l'échantillonnage de l'air n'est généralement pas nécessaire lors d'une investigation 



[PDF] I1 Protocole Un plan détude détaillé expliquant comment les

L'aire minimale va être matérialisée par la construction d'une courbe On établit un graphique en mentionnant en abscisse la surface étudiée en mètres carrés et 

  • Quelle est la fréquence d'échantillonnage minimale ?

    Il est admis depuis longtemps que la fréquence la plus élevée à reproduire en audio est de 20 kHZ. Ceci veut dire que la fréquence d'échantillonnage doit au minimum être de 40 kHz. La fréquence d'échantillonnage Fe doit être égale ou supérieure au double de la fréquence maximale du signal à coder.

  • Comment echantillonner l'air ?

    L'échantillon d'air est projeté directement sur des lames de verre avec membrane adhésive (cassettes de type « trappe à spores ») ou, plus rarement, sur des filtres de porosité ayant démontré leur capacité de rétention des spores. Réalisée directement sur la lame par un examen microscopique direct.15 avr. 2019

  • Quels sont les deux types d'échantillonnage ?

    Dans cette section, les méthodes d'échantillonnage probabiliste seront décrites brièvement et illustrées à l'aide d'exemples.

    ?hantillonnage aléatoire simple. ?hantillonnage systématique. ?hantillonnage stratifié ?hantillonnage par grappes. ?hantillonnage à plusieurs degrés. ?hantillonnage à plusieurs phases.
  • En statistique, un échantillon est un ensemble d'individus représentatifs d'une population. L'échantillonnage vise à obtenir une meilleure connaissance d'une ou plusieurs population(s) ou sous-populations(s) par l'étude d'un nombre d'échantillons jugé statistiquement représentatif.

Echantillonnage de

la végétation Jonathan Lenoir (MCU), jonathan.lenoir@u-picardie.fr http://www.u-picardie.fr/edysan/

Plan du cours

1. Pourquoi réaliser des inventaires floristiques?

1.1. Contexte et objectifs

2.1. Définir les variables à relever sur le terrain

2.3. Préparer la phase de terrain

2.4. Saisir les données sur le terrain

2.5. Préparer les données pour les analyses

2.6. Traiter les données

2.7. Rédiger un rapport

1.2. Un exemple concret

Plan du cours

1. Pourquoi réaliser des inventaires floristiques?

1.1. Contexte et objectifs

2.1. Définir les variables à relever sur le terrain

2.3. Préparer la phase de terrain

2.4. Saisir les données sur le terrain

2.5. Préparer les données pour les analyses

2.6. Traiter les données

2.7. Rédiger un rapport

1.2. Un exemple concret

Quel est le contexte de votre étude?

de se poser les bonnes questions : -Quel contexte? Quels objectifs? Quels hypothèses? Quels moyens? Quel public? Quelles valorisations? ¾Exemples de contextes aux objectifs distincts : -Objectif recherche : répondre à une question scientifique (e.g., impacts des changements globaux sur les communautés végétales) -Objectif gestion : réaliser une typologie ou un catalogue (e.g.,

Natura2000)

Plan du cours

1. Pourquoi réaliser des inventaires floristiques?

1.1. Contexte et objectifs

2.1. Définir les variables à relever sur le terrain

2.3. Préparer la phase de terrain

2.4. Saisir les données sur le terrain

2.5. Préparer les données pour les analyses

2.6. Traiter les données

2.7. Rédiger un rapport

1.2. Un exemple concret

forestiers sur le plateau calcaire Lorrain

¾Contexte :

¾Objectifs :

rencontrés sur le site Lorrain) sur le terrain

Situation et contexte général

Source : IFN

Source : Météo France

Contexte géomorphologique

¾Profil topographique typique sur le plateau calcaire Lorrain :

Plateaude Haye (54)

¾Variables écologiques clés responsables de la variabilité observée : -La topographie -Le sol

Plateaude Haye (54)

N

Contexte topographique

Topographie :

-Bilan radiatif -Bilan hydrique

Versant Sud

Fond de vallon

Versant Nord

Plateau

(Cst; Cst)

Contexte édaphique

Plateaude Haye (54)

Sol : -Ressources minérales -Capacitées hydriques

Sols épais

évolués issusde

limonssur argiles de décarbonatation

Sols maigres peu

évolués issus

rgiles de décarbonatation

Sols profonds

peu évolués issus de colluvions calcaires

Hêtraies-Chênaies à Pâturin

Deschampsia

cespitosa

Polytrichum

formosum 11

Atrichum

undulatum Poa chaixii

Sols épais évolués

issusdelimons sur argiles de décarbonatation

Plateau

(Cst; Cst)

Niveau trophique :

-Acidicline

Niveau hydrique :

-Mésophile

Galium

odoratum

Melica

uniflora 2 Hêtraies-Chênaies à Aspérule et Mélique

Niveau trophique :

-Calcicole à neutrocline

Niveau hydrique :

-Xérophile à mésophile

Plateau

(Cst; Cst)

Sols maigres peu

évolués issus

rgiles de décarbonatation 3

Lunaria

rediviva

Asplenium

scolopendrium

Polystichum

aculeatum

Érablaies-Tillaies à Scolopendre et

Lunaire à éboulis grossiers

Sols peu évolués à

éboulis grossiers

Versant Nord

Niveau trophique :

-Calcicole

Niveau hydrique :

-Hygrosciaphile

Cardamine

heptaphilla

Actaea

spicata 4

Hêtraies à Dentaires à éboulis fins

Sols peu

évolués à

éboulis fins

Versant Nord

Niveau trophique :

-Neutrocline à calcicole

Niveau hydrique :

-Hygrosciaphile 5

Scillia

bifolia

Leucojum

vernum

Aconitum

vulparia

Chênaies-Frênaies à Aconit et Nivéole

Niveau trophique :

-Neutrophile

Niveau hydrique :

-Hygrosciaphile

Sols profonds

peu évolués à colluvions calcaires

Fond de vallon

6

Lithospermum

purpurocaeruleum

Melittis

melisophyllum

Sesleria

caerulea Hêtraies-Chênaies sèches à Seslérieet

Grémil

Versant Sud

Sols peu

évolués à

éboulis fins

Niveau trophique :

-Calcicole

Niveau hydrique :

-Xérophile 7

Cephalanthera

rubra

Coronilla

emerus

Chênaies pubescentes à Céphalantère

Niveau trophique :

-Calcicole

Niveau hydrique :

-Hyper xérophile

Versant Sud

Sols peu évolués à

éboulis grossiers

Pool végétal local

(stock dendrologique) (stockherbacé)

Plateaude Haye (54)

Abiotiques :

-Topographie -Sol

Biotiques :

-Compétition

Plateaude Haye (54)

112
73
4 5 6

Abiotiques :

-Topographie -Sol

Biotiques :

-Compétition

Exemple de clé de détermination

Situation

topographique

Plateaux

Pente

Fond de

vallonType 5

Exposition

Sol

Profond

maigre

Type 1

Type 2

Nord Sud Sol Sol

Profond

maigre

Profond

maigre

Type 3

Type 4

Type 7

Type 6

Exemple de préconisations pour le type

Hêtraies-Chênaies à Aspérule et Mélique -Pour les autres essences, la profondeur du sol sera décisive. Elle sera jugée limitantesi elle est inférieure à 50-60 cm abondance en eau inférieur à 100 mm) -Les réserves hydriques sont le plus souvent modestes tout en restant suffisantes pour assurer une bonne productivité du Hêtre dans la région (précipitations : 850 mm et bon bilan climatique)

¾Itinéraire sylvicole :

-Gérer les peuplements feuillus existants en futaie irrégulière -Opter pour des itinéraires techniques permettant le vieillissement des peuplements jusqu'à des stades mâtures

Plan du cours

1. Pourquoi réaliser des inventaires floristiques?

1.1. Contexte et objectifs

2.1. Définir les variables à relever sur le terrain

2.3. Préparer la phase de terrain

2.4. Saisir les données sur le terrain

2.5. Préparer les données pour les analyses

2.6. Traiter les données

2.7. Rédiger un rapport

1.2. Un exemple concret

Fiche de relevé : variables de milieu

MILIEUN°Relevé:

Date :Auteurs:Nom fichier GPS:Photo:

Situation juridique:FD / FC / FP Commune :Carte topographique:

Numéro de parcelle:X:Y:Z:

Surf. flore:Forme placette:N°1:gr;m2:gr;m3:gr;m4:gr;m

Conditions écologiques permanentes

Topographie: Butte ou croupe - crête - plateau ou zone plane - dépression - doline - rebord de plateau - 1/3>versant - milieu versant -

1/3

Drainage: départ - équilibre - apports faibles à moyens - apports importants - nappe courante

Exposition[gr]:Pente[gr]:Confinement[gr]:Affleurmt. rocheux[%]:Nature:

Humus (horizon organique)

Clé d'identification des humus:

NomNatureRecouv[%]Epaisseur[mm]-A grumuleux, transition o/A nette

Oln/Olt-(OL): eumull

Olv-Oln +(Olv): mésomull

OF-Oln+Olv+(OF): oligomull

OH-Oln+Olv+OF: dysmull

* % max. de boulettes fécales:-Oln+Olv+OF+OH: amphimull * Transition O/A [mm]: -A de juxtaposition, transitionO/A progressive * % grumeaux [HzA]:-Oln+Olv+OF: hémimoder -Oln+Olv+OF+OH(<1cm): eumoder StructureA: massif - particulière - grumuleuse-Oln+Olv+OF+OH(>1cm): dysmoder Effervescence HzA en surface: oui - non-A absent ou de diffusion,transitionO/horiz.min.nette

Forme d'humus:-Oln+Olv+OF+OH: mor

-A hydromorphe: hydromull, hydromoder ou hydromor

Profil pédologique (horizons minéraux)

Info généralMéthode d'observation du profil:1:T2:P4:P+T

Cause d'arrêt: volontaire - nappe - hz compact - hz induré - pierrosité imp. - dalle - indéterminé

Horizons mineraux

N°Prof.TextureEG CompacitéCouleur

lim<[cm]taille dom.% tot. %>7,5 cmNat. 1 2 3 4 5 * Formation superficielle: issue de la roche mère - colluvions - alluvions - glaciaires - limons EnracinementProfondeur d'arrêt prospection:Compacité: Toxicité CaProfondeur efferv. HCl:1 : meuble (couteau pénètre sans effort)

Conditions hydriquesProfondeur apparition hydromorphie:2 : peu compact (couteau pénètre avec un léger effort)

Profondeur du plancher:3 : compact (couteau pénètre incomplètement avec effort)

* Prélévement A (systématique):4 : très compact (couteau ne pénètre de quelques mm)

*Prélévement B (exhaustif):5 : induré ou cimenté (couteau ne pénètre pas dans l'Hz)

Abaque surface des placettes floristiques (250m²):Commentaires:

1:2:3:4:5:

Abaque surface des placettes floristiques (400m²):

1:2:3:4:5:Conditions météo:

Nom 15.8m

15.8m22.3m

20m

12.5m23.6m

25m

10m26.9m

30m

8.3m31.1m8.9m

20m

20m28.3m

25m

16m29.7m

30m

13.3m32.8m

35m
11.4m

36.8m11.3m

¾Informations générales :

-Nom du(des) auteur(s) -Numéro du relevé et surface

¾Situation spatiale et temporelle :

-Date et heure -Commune, lieu-dit, coordonnée GPS

¾Conditions microclimatiques :

-Position topographique -Pente, exposition, altitude

¾Conditions édaphiques :

-Profil pédologique

Fiche de relevé : variables de milieu

Fiche de relevé : variables de milieu

Fiche de relevé : variables floristiques

VEGETATIONN°Relevé:

FormationRecouvrement [%]Couvert [%]

FRFRJFJRFJstrate muscinalestrate arborée>7 mstarte arbustive et arborée>1 m strate herbacée< 1 mstrate arbustive1-7m*Noter les espèces en limites (L) Essences<1m1-7m>7 m0-7m<1m1-7m>7 m0-7m<1m1-7m>7 m0-7m

Abies albaIlex aquifoliumSorbus aucuparia

Acer campestreLarix deciduaSorbus mougeotii

Acer platanoidesPicea abiesSorbus torminalis

Acer pseudoplatanusPinus sylvestrisTaxus baccata

Alnus glutinosaPopulus tremulaTilia cordata

Betula pendulaPrunus aviumTilia platyphyllos

Betula pubescensQuercus petraeaUlmus glabra

Carpinus betulusQuercus pubescensUlmus minor

Castanea sativaQuercus robur

Fagus sylvaticaRobinia pseudoaccacia

Fraxinus excelsiorSorbus aria

Flore spontanéeL: limite de placetteR: sur rocherS: sur souche LIGNEUX32: Carex alba102: Lathyrus pratensis172: Veronica officinalis

1: Berberis vulgaris33: Carex brizoides103: Lathyrus vernus173: Veronica urticifolia

2: Cornus mas34: Carex digitata104: Lilium martagon174: Veronica chamaedrys

3: Cornus sanguinea35: Carex flacca105: Listera cordata175: Veronica montana

4: Corylus avellana36: Carex montana106: Listera ovata176: Vicia sepium

5: Cotoneaster nebrodensis37: Carex pendula107: Luzula forsteri177: Vinca minor

6: Crataegus laevigata38: Carex pilosa108: Luzula luzulina178: Viola canina

7: Crataegus monogyna39: Carex pilulifera109: Luzula luzuloides179:Viola mirabilis

8: Daphne laureola40: Carex remota110: Luzula pilosa180: Viola odorata

9: Daphne mezereum41: Carex sylvatica111: Luzula sylvatica181: Viola reichenbachiana

10: Evonymus europaeus42: Cephalanthera dama.112: Lysimachia nemorum182: Viola riviniana

11: Frangula alnus43: Cephalanthera long.113: Maianthemum bifoliumFOUGERES

12: Juglans regia44: Cephalanthera rubra114: Melampyrum sylvaticum183: Asplenium ramosum

13: Ligustrum vulgare45: Chaerophyllum hirsutum115: Melica nutans184: Asplenium ruta-muraria

14: Lonicera alpigena46: Chaerophyllum villarsii116: Melica uniflora185: Asplenium scolop.

15: Lonicera nigra47: Chrysosplenium alter.117: Melittis melissophyllum186: Asplenium trichomanes

16: Lonicera periclymenum48: Chrysosplenium opp.118: Mercurialis perennis187: Athyrium distentifolium

17: Lonicera xylosteum49: Cicerbita alpina119: Milium effusum188: Athyrium filix-femina

18: Prunella vulgaris50: Circaea alpina120: Moehringia muscosa189: Blechnum spicant

19: Prunus spinosa51: Circaea lutetiana121: Moehringia trinervia190: Cystopteris fragilis

20: Rhamnus alpinus52: Circaea x-intermedia122: Molinia caerulea191: Dryopteris carthusiana

21: Rhamnus catharticus53: Clematis vitalba123: Mycelis muralis192: Dryopteris dilatata

22: Ribes alpinum54: Convallaria majalis124: Narcissus pseudonar.193: Dryopteris filix-mas

23: Ribes rubrum55: Crepis paludosa125: Neottia nidus-avis194: Gymnocarpium dryop.

24: Ribes uva-crispa56: Dactylis glomerata126: Orchis mascula195: Phegopteris connectilis

25: Rosa arvensis57: Dactylorhiza maculata127: Ornithogalum pyrenaicum196: Polypodium vulgare

26: Rosa pendulina58: Deschampsia cespitosa128: Orthilia secunda197: Polystichum aculeatum

27: Rubus idaeus59: Epilobium angustifolium129: Oxalis acetosella198: Polystichum lonchitis

28: Rubus saxatilis60: Epilobium montanum130: Paris quadrifolia199: Pteridium aquilinum

29: Rubus sp.61: Epipactis atrorubens131: Petasites albus200: Thelypteris phegopteris

30: Ruscus aculeatus62: Epipactis helleborine132: Phyteuma spicatumMOUSSES

31: Sambucus nigra63: Equisetum sylvaticum133: Pimpinella major201: Atrichum undulatum

32: Sambucus racemosa64: Euphorbia amygdaloides134: Poa nemoralis202: Barbilophozia lycop.

33: Vaccinium myrtillus65: Euphorbia cannabinum135: Polygonatum multiflo.203: Calypogeia muelleriana

34: Viburnum lantana66: Euphorbia dulcis136: Polygonatum verti.204: Cirriphyllum piliferum

35: Viburnum opulus67: Festuca altissima137: Polygonum bistorta205: Ctenidium molluscum

36: Salix appendiculata68: Festuca gigantea138: Potentilla erecta206: Dicranum scoparium

37: Salix caprea69: Festuca heterophylla139: Potentilla sterilis207: Eurhynchium striatum

HERBACEES70: Filipendula ulmaria140: Prenanthes purpurea208: Fissidens bryoides

1: Aconitum vulparia71: Fragaria vesca141: Primula elatior209: Fissidens taxifolius

2: Actaea spicata72: Galeopsis tetrahit142: Pulmonaria officinalis210: Hylocomium splendens

3: Adenostyles alliariae73: Galium mollugo143: Pyrola minor211: Hypnum cupressiforme

4: Adoxa moschatellina74: Galium odoratum144: Ranunculus aconitifolius212: Isothecium alopec.

5: Agrostis capillaris75: Galium pumilum145: Ranunculus lanuginosus213: Lophocolea bidentata

6: Agrostis stolonifera76: Galium rotundifolium146: Ranunculus nemorosus214: Marchantia polymorpha

7: Ajuga reptans77: Galium sylvaticum147: Ranunculus platanifolius215: Neckera crispa

8: Alchemilla vulgaris78: Geranium robertianum148: Rumex acetosa216: Pellia epiphylla

9: Alliaria petiolata79: Geranium sylvaticum149: Rumex arifolius217: Plagiochila asplenio.

10: Anemone nemorosa80: Geum rivale150: Salvia glutinosa218: Plagiomnium affine

11: Angelica sylvestris81: Geum urbanum151: Sanicula europaea219: Plagiomnium undul.

12: Anthoxanthum odoratum82: Glechoma hederacea152: Saxifraga rotundifolia220: Pleurozium schreberi

13: Anthriscus sylvestris83: Hedera helix153: Scrophularia auriculata221: Polytrichum commune

14: Aquilegia vulgaris84: Helleborus foetidus154: Senecio ovatus ovat.222: Polytrichum formosum

15: Arum maculatum85: Hepatica nobilis155: Sesleria caerulea223: Ptilium crista-castren.

16: Aruncus dioicus86: Heracleum sphondylium156: Silene dioica224: Rhizomnium punct.

17: Asarum europaeum87: Hieracium murorum157: Solanum dulcamara225: Rhytidiadelphus lor.

18: Astrantia major88: Hippocrepis emerus158: Solidago virgaurea226: Rhytidiadelphus squar.

19: Atropa bella-donna89: Homogyne alpina159: Stachys officinalis227: Rhytidiadelphus triquet.

20: Brachypodium sylv.90: Hordelymus europaeus160: Stachys sylvatica228: Scleropodium purum

21: Bromus ramosus91: Hypericum hirsutum161: Stellaria holostea230: Thamnium alopec.

22: Buxus sempervirens92: Hypericum maculatum162: Stellaria nemorum231: Thuidium tamar.

23: Caltha palustris93: Hypericum montanum163: Streptopus amplexifolius232: Tortella tortuosa

24: Campanula cochlea.94: Hypericum perforatum164: Taraxacum officinaleESPECES SUPPLEMENTAIRES

25: Campanula rhomb.95: Hypericum pulchrum165: Teucrium scorodonia

26: Campanula trach.96: Impatiens noli-tangere166:Thalictrum aquilegifolium

27: Cardamine amara97: Juncus sp.167: Thlaspi montanum

28: Cardamine flexuosa98: Knautia dipsacifolia168: Urtica dioica

29: Cardamine heptaphylla99: Laburnum anagyroides169: Valeriana dioica

30: Cardamine pratensis100: Lamium galeobdolon170: Valeriana officinalis

31: Carduus personata101: Lathyrus montanus171: Veratrum album

Abondance dominance: + : plantes disséminées, 1 : surf. faible, nb pieds importants, 2 : surf. 5 à 25 %, 3 : surf. 25 à 50 %, 4 : surf. 50 à 75 %, 5 : surf. sup à 75 %

¾Stratification verticale :

-Recouvrement par strate (arborée, arbustive, herbacée, muscinale)

¾Abondance/dominance (Braun-Blanquet) :

+ : abondance faible à très faible (recouvrement très faible)

1 : abondance assez importante mais

recouvrement faible ;

2 : abondance importante ou recouvrement

compris entre 5 et 25 % ;

3 : recouvrement de 25 à 50 %, abondance

quelconque ;

4 : recouvrement de 50 à 75 %, abondance

quelconque ;quotesdbs_dbs12.pdfusesText_18

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