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pdf Travaux pratiques et travaux dirigés de biologie vegetale

ensemble de travaux pratiques et de travaux dirigés de biologie végétale Il est destiné aux étudiants de tronc commun sciences de la nature et de la vie des sciences de la terre et de l’univers de l’agronomie et de foresterie

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Université Frère Mentouri Constantine 1

Institut de la Nutrition, Alimentation et des Technologies Agro-Alimentaires INATAA-

Filière : sciences alimentaires

Département : technologie alimentaire

Promotion : 2ème année Licence

Enseignants : KEHAL F. (MAA)

BENAMARA M. (MCB)

BOUGUERRA A. (MAA)

ZERIZER H. (MCA)

Année universitaire : 2019 /2020

Travaux pratiques de physiologie végétale

Tp physiologie végétale

TP ʋ1. Analyse du sol

Introduction

Les analyses physicochimiques du sol permettent aux agriculteurs fertilisations des sols et de laux programmes de fertilisation complémentaire en fonction des besoins de

meilleur rendement au niveau de la productivité, maitriser les coûts de production et de

Préparation du sol

Séchage : pour obtenir un sol uniforme

Broyage : pour augmenter la surface de contacter entre le sol et les réactifs

Expérience 01. Dosage du calcaire dans le sol

Le calcaire total correspond à la quantité de Carbonate de calcium (CaCO3) - Peser 1g de sol et verser dessus une solution de HCl (1N) ; après effervescence ajouter une et verser sur le filtre. constant. - Mesurer le pou : % de calcaire = (Pi - Pf)/Pi*100 ou : Pi : poids initial du sol ; Pf : poids final du sol. - La formule de la réaction est la suivante :

CaCO3 + 2 HCl =========Î CaCl2 + H2O + CO2

Carbonate de Calcium + Acide chlorhydrique ==Î Chlorure de Calcium Expérience 02. Dosage de la matière organique dans le sol - 2O2 concentré, et remuer (le H2O2 concentré détruit la matière organique ; les produits sont dégradés en CO2, H2O et NO2 et parfois

SO2) ;

- Filtrer ; % de MO = (Pi - Pf)/Pi*100

Pi : poids initial ;

Pf : poids final.

- Les sols sont répartis en trois classes :

Tp physiologie végétale

2 AE Teneur faible < 4% ; Teneur modérée 4-9% ; Teneur élevée 9-30%

Expérience 03. Technique de sédimentation

La méthode de sédimentation consiste à séparer les constituants du sol en fonction de leurs

poids selon la loi de stockes.

1. Fraction grossière > 2 mm ;

2. Sable grossier : 2 à 0.2 mm ;

3. Sable fin : 02 à 0.04 mm ;

4. Limon : 0.04 à 0.002 mm;

5. Argile < 0.002 mm.

Selon les résultats obtenus, les sols se classent en différentes catégories :

9 Sableux

9 Limoneux

9 Argileux

Expérience 04. Mesure du pH

2/3), agiter la solution

pendant une minute. Procéder à la lecture du pH. On classe les sols selon leur acidité de la manière suivante : pH <4.5 : sols très acides

4.5
6 pH> 7 : sols calcaire (basique)
Tp physiologie végétale
3 ʋ02. Détermination de la pression osmotique par la méthode de la plasmolyse- limite
Introduction

L'osmose est un phénomène de diffusion de la matière mis en évidence lorsque des molécules

d'eau (de solvant de façon générale) traversent une membrane semi-perméable qui sépare
deux liquides dont les concentrations en produits dissous sont différentes. La différence de concentration provoque une différence de pression osmotique qui engendre un déplacement du solvant à travers la membrane.
1. Matériels et réactifs
- Bulbe d'oignon ; - Onze (11) verres de montre ; - Solution de saccharose M (1 mol.L-1) (soit 342 g/L ou 34,2%) ; - Eau distillée ; - 2 pipettes de 5 ml; - Lame-lamelles ; - Microscope optique ; - pinces fines et rasoir.
2. Méthodes

2.1 Principe
de solutions de concentration croissante, celle qui en équilibre osmotique avec les cellules.
produit un faible début de plasmolyse (plasmolyse limite) est pratiquement isotonique du
milieu cellulaire.
2.2 Protocole
- Préparer une série de 11 tubes contenant des concentrations croissantes de saccharose ; - Mettre quelques millilitres de chaque solution dans 11 verres de montre posés sur une feuille de papier, sur laquelle on indiquera les concentrations correspondantes ; - Prélever d ; - Placer les morceaux d'épiderme dans les verres de montre ;
Tp physiologie végétale
4 - Attendre 15 à 30 min et observer.
Tableau 01.

ʋ 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11
V3 de la solution de sacc.(mL) 0 0.5 1 1.5 2 2.5 3 3.5 4 4.5 5
5 4.5 4 3.5 3 2.5 2 1.5 1 0.5 0
Concentration molaire (mol.L-1) 0 0,1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 1
3. Interprétation des résultats
- Les cellules sont turgescentes pour les faibles concentrations de milieu et plasmolysées pour les fortes concentrations ; - Il existe une concentration pour laquelle on observe une très légère plasmolyse (plasmolyse limite) ; - par ce mouvement (pression osmotique) est équilibrée par la pression de réaction de la paroi (pression de paroi ou pression de turgescence). - Calculer la pression osmotique du suc vacuolaire en fonction des résultats observés,
Exemple :
- Si la dernière préparation turgescente correspond au verre de montre n°4 (concentration molaire en saccharose : 0.3) et la première préparation plasmolysée correspond au n°5 (concentration molaire en saccharose : 0.4) on peut écrire que la concentration molaire de la solution isotonique au suc vasculaire et par conséquent la concentration molaire m du suc vacuolaire est compris entre
03 - La pression osmotique du suc vacuolaire est donc comprise entre les valeurs :
22.4*0.3
Tp physiologie végétale
5 ʋ.Extraction et séparation des différents pigments photosynthétiques
Introduction
Les organismes chlorophylliens sont capables de synthétiser des molécules organiques
source d'énergie s'appelle la photosynthèse. L'utilisation de l'énergie lumineuse est rendue

d'onde lorsqu'elles sont éclairées par de la lumière blanche. Cette propriété leur donne une
couleur déterminée. Les chlorophylles sont les pigments majeurs impliqués dans la capture des photons. La
chlorophylle est synthétisée et dégradée dans l'enveloppe du chloroplaste, mais elle n'est
présente et active comme pigment que dans les thylacoïdes. Les caroténoïdes accompagnent toujours les chlorophylles dans les membranes thylacoïdales
où ils jouent apparemment le double rôle de pigments accessoires pour la capture de l'énergie

lumineuse et de photoprotecteurs contre les intensités lumineuses élevées. On les trouve

également associés à l'enveloppe du chloroplaste. Ils sont aussi très répandus dans de

nombreux tissus végétaux (parenchyme de Tomate, racines de Carottes, pétales, écorce
d'Orange,etc...).
1. Matériels et réactifs

Un mortier et pilon ;
sable de mer ; une éprouvette (25, 50, 100mL); un papier filtre ; un bécher (10 et 50 mL) ; erlenmeyer (10 et 50 mL) ; un entonnoir, une pipette Pasteur ;
Ether de pétrole ;

Acétone ;

Dichloroéthane ;
un agitateur magnétique, une tige et un barreau (aimant) ; une bande de papier chromatographie de 2 cm de large ; papier aluminium.
Tp physiologie végétale
6
2. Extraction des différents pigments photosynthétiques
(papier aluminium) afin de minimiser les risques de dégradation des pigments.
1) épinard ;

2) Couper le matériel végétal en petits fragments ;

3) pour obtenir un mélange acétone/eau de concentration final 80%
) et broyer jusqu'à obtenir un mélange homogène ;
4) Ajout

5) Laisser décanter quelques minutes (10min) ;

6) Récupérer le surnageant dans un erlen 10mL (de préférence, filtrer sur papier filtre et
recueillir la solution acétonique de chlorophylles) et compléter 80% ;

7) Fermer avec du parafilm et agiter.

Remarque :
éventuellement en tamponnant le milieu avec la craie (CaCO3) ; - Ajouter de Chlorure de Calcium (CaCl2 perméabilisant la membrane chloroplastique.
2. Séparation des différents pigments photosynthétiques par chromatographie sur
papier apolaire -à--à-dire
1) Introduire dans le tube de chromatographie 10mL de solvant de migration (éther de
pétrole/acétone/dichloroéthane : 8.5/1/0.5 v/v/v) - éluant - () ;
2) Fermer hermétiquement le tube ;
3) chromatographie (afin que le dépôt ne soit pas en contact avec le solvant) ;
4) Déposer
dilué sur le trait et sécher (
Tp physiologie végétale
7
5) Introduire le chromatogramme dans le tube entouré de papier noir puis fermer le tube ;

6) Arrêter la migration quand le front du solvant aura atteint 20cm.

7) Sécher la chromatographie

2.3 Analyse des résultats
Dessiner le chromatogramme, identifier les pigments en vous aidant des formules, justifier leurs ordres de migration. a) ȕ-Carotène(C40H56) : de couleur orangé; b) Chlorophyllea (C55H72O5N4Mg): de couleur vert bleuté; c) Chlorophylleb (C55H70O6N4Mg): de couleur vert jaune; d) Xanthophylle(C40H56O2) : de couleur jaune.
Tp physiologie végétale
8
Introduction
La photosynthèse est un mécanisme biochimique permettant aux végétaux supérieurs 2.
siège dans des organites propres à la cellule chlorophyllienne: les chloroplastes. De
nombreuses protéines et autres molécules contribuent au mécanisme, parmi eux les pigments
photosynthétiques : Chlorophylle a et b ainsi que les caroténoïdes. Ce sont les molécules
Le but de cette expérience est de quantifier par une méthode spectrophotométrique les
1. Matériels et réactifs

Spectrophotomètre ;

Deux (02) mortiers et pilons ;

Une éprouvette (25, 50, 100mL);

Un papier filtre ;

Trois (03) béchers (25 et 50 mL) ;

Deux (02) erlenmeyers (25 et 50 mL) ;

Deux (02) petits entonnoirs ;

Dix (10) pipettes Pasteur ;

Cinq (05) pipettes (1, 5 et 10ml) ;

Une poire ;

Cétone (250ml) ;
Un agitateur magnétique, une tige et un barreau (aimant) ;
2. Extraction des différents pigments photosynthétiques
(papier aluminium) afin de minimiser les risques de dégradation des pigments. Couper le matériel végétal en petits fragments ; pour obtenir un mélange acétone/eau de concentration final ) et broyer jusqu'à obtenir un mélange homogène ;
Tp physiologie végétale
9 yer de nouveau soigneusement ;
Laisser décanter quelques minutes (10min) ;
Récupérer le surnageant dans un erlen 10mL (de préférence, filtrer sur papier filtre et recueillir la solution acétonique de chlorophylles) et compléter à 10mL avec de 80% ;

Fermer avec du parafilm et agiter.

3. Dosage des pigments totaux

3.1 Rappel
La lumière blanche est composée de différentes radiations visibles dont la longueur -800 nm (rouge foncé). Une substance colorée absorbe
préférentiellement certaines radiations de la lumière blanche. Cette propriété lui donne sa

couleur. Si cette substance est un photorécepteur, les radiations absorbées peuvent être celles
qui agissent sur lui et entraînent une photo-réaction.
3.2 Protocole
- Fermer la fiole avec du parafilm et agiter ; - recommencer les opérations successivement à 6 pour chaque longueu
3.3 Interprétations des résultats
-dessous établies à partir de loi de BEER-LAMBERT permettent de calculer les concentrations en pigments :
Ca = 12.7 A663 2.63 A645

Cb = 22.9 A645 4.68 A663 en mg.L-1

Ccar = 5 A460 (3.19Ca + 130.3 Cb)/200

Tp physiologie végétale
10
TP ʋ5. Germination des graines

Introduction
La germination est une phase physiologique qui correspond à la transition de la phase de vie
latente de la graine sèche à la phase de développement de la plantule. Le processus de
germination commence dès que la graine sèche est hydratée. perméabilité des tégu
du métabolisme, qui préparent le déclenchement de la croissance. Au cours de la période de
débutquotesdbs_dbs20.pdfusesText_26

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Département : technologie alimentaire

Promotion : 2ème année Licence

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Travaux pratiques de physiologie végétale

Tp physiologie végétale

TP ʋ1. Analyse du sol

Introduction

Préparation du sol

Séchage : pour obtenir un sol uniforme

Expérience 01. Dosage du calcaire dans le sol

CaCO3 + 2 HCl =========Î CaCl2 + H2O + CO2

SO2) ;

Pi : poids initial ;

Pf : poids final.

Tp physiologie végétale

Expérience 03. Technique de sédimentation

1. Fraction grossière > 2 mm ;

2. Sable grossier : 2 à 0.2 mm ;

3. Sable fin : 02 à 0.04 mm ;

4. Limon : 0.04 à 0.002 mm;

5. Argile < 0.002 mm.

9 Sableux

9 Limoneux

9 Argileux

Expérience 04. Mesure du pH

2/3), agiter la solution

Tp physiologie végétale

Introduction

1. Matériels et réactifs

2. Méthodes

2.1 Principe

2.2 Protocole

Tp physiologie végétale

Tableau 01.

ʋ 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11

5 4.5 4 3.5 3 2.5 2 1.5 1 0.5 0

3. Interprétation des résultats

Exemple :

Tp physiologie végétale

Introduction

1. Matériels et réactifs

Un mortier et pilon ;

Ether de pétrole ;

Acétone ;

Dichloroéthane ;

Tp physiologie végétale

2. Extraction des différents pigments photosynthétiques

1) épinard ;

2) Couper le matériel végétal en petits fragments ;

3) pour obtenir un mélange acétone/eau de concentration final 80%

4) Ajout

5) Laisser décanter quelques minutes (10min) ;

6) Récupérer le surnageant dans un erlen 10mL (de préférence, filtrer sur papier filtre et

7) Fermer avec du parafilm et agiter.

Remarque :

2. Séparation des différents pigments photosynthétiques par chromatographie sur

1) Introduire dans le tube de chromatographie 10mL de solvant de migration (éther de

2) Fermer hermétiquement le tube ;

4) Déposer

Tp physiologie végétale

5) Introduire le chromatogramme dans le tube entouré de papier noir puis fermer le tube ;

6) Arrêter la migration quand le front du solvant aura atteint 20cm.

7) Sécher la chromatographie

2.3 Analyse des résultats

Tp physiologie végétale

Introduction

1. Matériels et réactifs

Spectrophotomètre ;

Deux (02) mortiers et pilons ;

Une éprouvette (25, 50, 100mL);

Un papier filtre ;

Trois (03) béchers (25 et 50 mL) ;

Deux (02) erlenmeyers (25 et 50 mL) ;