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M:Institut National Polytechnique de Toulouse (INP Toulouse) Mécanique, Energétique, Génie civil et Procédés (MEGeP) INTENSIFICATION DE LA BRIQUE "FERMENTATION ALCOOLIQUE" DE SUBSTRATS BETTERAVIERS (ET AUTRES SUBSTRATS) POUR LA PRODUCTION

D'ETHANOL

vendredi 9 novembre 2012

Julien Riess

Génie des procédés et de l'environnement

Pr. Mohamed GHOUL

Pr. Jean-Marie SABLAYROLLESPr. Patricia TAILLANDIER Dr. Claire JOANNIS-CASSANUMR 5503 Laboratoire de Génie Chimique

Pr. Jean-Luc BARET

M. Bruno GAGNEPAIN

M. Franck JOLIBERT

Pr. Pierre STREHAIANO

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces

cerevisiae

...................................................................................................................... 22

.................................................................................................. 22

........................................................ 37

Saccharomyces cerevisiae

................................................................................ 54

.................................................................................................... 60

..................................................................................................... 60

........................................................................................................................... 61

............................................................................ 63 ........................... 68 ................................................................... 68 ..................................................... 70 ................................................................. 71

......................................................................................................... 72

..................................................................................... 78 ..................................................................... 88

Saccharomyces cerevisiae

.................................. 126 ................................................................................................ 148 .............................................. 151

.............................................................................................................. 154

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces

cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae,

Saccharomyces cerevisiae

Intensification de la brique " fermentation alcoolique » de substrats betteraviers pour la production d"éthanol 10/2012

Chapitre I : Etude bibliographique

ADEME Page 26 sur 177 Le but de cette opération est de former la masse-cuite (sucre refroidi) par cristallisation du sucre

c onte nu dans le sirop. L"introduction de très fins cristaux dans le sirop amorce la cristallisation du

sucre, qui se propage spontanément. L"essorage permettra de séparer d"une part le sucre cristallisé et

la mélasse. Figure 2: Schéma de production de bioéthanol à partir de betteraves sucrières

Les v

aleurs présentées tableau 2 ne sont que des moyennes observées car la composition des

différents jus peut fortement varier selon les procédés utilisés, selon les variétés de betteraves

sucrières utilisées ou encore selon les sols cultivés.

Intensification de la brique " fermentation alcoolique » de substrats betteraviers pour la production d"éthanol 10/2012

Chapitre I : Etude bibliographique

ADEME Page 28 sur 177 Dans le cas du " dry milling », illustré figure 3, les grains sont nettoyés et broyés. L"amidon est

h ydro

lysé en deux étapes par voie enzymatique. La première étape, réalisée à l"aide d"une -amylase

est appelée liquéfaction. La seconde étape est appelée saccharification et utilise une

amyloglucosidase. Ceci aboutit à la formation d"un sirop de glucose. Ce sirop sera alors utilisé pour

produire de l"éthanol par fermentation. Les drèches et les vinasses seront valorisées en alimentation

animale. Les étapes de saccharification et de fermentation peuvent être associées afin de diminuer la

durée du procédé. Ceci permet de libérer le glucose au rythme souhaité dans le milieu par la

régulation de l"activité amylolytique. Figure 3: Schéma de transformation des céréales en éthanol par voie "dry milling" Pour

ce qui est de la voie humide, ou " wet milling », illustrée figure 4, les grains sont trempés dans

une solution aqueuse contenant de l"acide sulfurique qui facilite la séparation des composants. Un

broyage est ensuite réalisé afin de séparer les composants. Ceci permet de séparer l"amidon du reste

de la plante et de générer de nombreux coproduits comme des huiles ou du gluten servant pour

l"alimentation humaine ou animale. L"amidon ainsi obtenu est ensuite liquéfié et saccharifié par voie

enzymatique.

Intensification de la brique " fermentation alcoolique » de substrats betteraviers pour la production d"éthanol 10/2012

Chapitre I : Etude bibliographique

ADEME Page 29 sur 177

Figure 4: Schéma de transformation des céréales en éthanol par la voie "wet milling" I.2.3 .1.c. A partir de matières premières lignocellulosiques

L"éthanol peut aussi être produit à partir de matière lignocellulosique, comme le bois, la paille, les

herbacées..., il est alors dit biocarburant de 2nde génération. Contrairement à l"amidon ou au

sacch

arose qui servent de réserves d"énergie pour la plante en vue d"une utilisation ultérieure, la

matière lignocellulosique sert de structure pour les plantes. Il s"agit donc d"une matière stable et

résistante aux agents extérieurs et donc plus difficile à dégrader. Elle est composée principalement de

lignines qui sont des composés polyphénoliques inutilisables par la levure, de cellulose et

d"hémicelluloses qui sont des composés polyosidiques. Comme pour l"amidon, la cellulose et les

hémicelluloses doivent être hydrolysées avant utilisation par la levure car elle n"a pas le pool

enzymatique nécessaire pour cela. Les procédés d"hydrolyse resemblent à ceux employés pour

l"amidon, ils employent soit un traitement acide soit un traitement enzymatique. Le premier est certes

peu cher mais il produit des inhibiteurs de fermentation et a un faible rendement d"hydrolyse. Le

traitement enzymatique à l"inverse, est onéreux à cause du coût de l"enzyme mais il est performant et

ne produit pas d"inhibiteurs (Taherzadeh et Karimi, 2007). Cependant, le développement des

technologies portant sur la production de carburant 2nde génération tendent diminuer le coût de

l"hyd rolyse enzymatique.

La production d"éthanol cellulosique fait actuellement l"objet de nombreuses recherches. Elle reste

une voie d"avenir due à la disponibilité de la matière première ainsi que la possibilité de fermenter

l"ensemble de la plante simultanément. I.2.3.1.d. Représentation mondiale des matières premières utilisées pour la production d"éthanol

Selon les régions du monde l"éthanol est produit à partir de différentes matières premières comme le

montre le tableau 4. Ceci s"explique à la fois par les climats rencontrés dans chaque pays mais aussi

par les spécificités historiques des pays comme pour la betterave en France. Les Etats-Unis

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiaeZymomonas mobilis

Zymomonas mobilis

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces

Intensification de la brique " fermentation alcoolique » de substrats betteraviers pour la production d"éthanol 10/2012

Chapitre I : Etude bibliographique

ADEME Page 39 sur 177

Figure 7: La glycolyse (Dickinson et Schweizer, 1999)

I.3.2.1.b. Le noeud métabolique du pyruvate

Après

la glycolyse le pyruvate peut être orienté, comme illustré figure 8, soit vers le cycle de l"acide

citrique soit vers la production d"éthanol. Lorsque le pyruvate est présent en grande quantité dans la

cellule, suite à une activité glycolytique intense, il est orienté vers la production d"éthanol.

Figure 8: Noeud métabolique du pyruvate

Intensification de la brique " fermentation alcoolique » de substrats betteraviers pour la production d"éthanol 10/2012

Chapitre I : Etude bibliographique

ADEME Page 41 sur 177 I.3.2.1.e. La voie des pentoses phosphates

L e gl ucose 6-phosphate est à la fois le substrat de la glycolyse et celui de la voie des pentoses

phosphates, illustrée figure 10. Le choix entre ces deux voies dépend des exigences cellulaires

ponctuelles en énergie métabolique (ATP), en précurseurs biosynthétiques et en potentiel redox. En

effet, la voie des pentoses phosphates sert à la production de NADPH qui est indispensable aux

réactions d"oxydoréduction des levures (Cipollina et col., 2009). Alors que la glycolyse est ralentie

lorsque la charge énergétique est élevée, la glucose 6-phosphate déshydrogénase (et donc la voie

des pentoses phosphates) est inhibée par des concentrations élevées de NADPH et par les

intermédiaires de la biosynthèse des acides gras. Ceci permet un maintien de l"équilibre entre

l"énergie et le pouvoir réducteur contenu dans la cellule.

Figure 10: Voie des pentoses phosphates

I.3.2 .2. Le métabolisme fermentaire

La fermentation est une réaction biochimique, à localisation cytoplasmique, permettant la libération de

l"énergie contenue dans un substrat organique par l"action d"enzymes microbiennes et qui aboutit à

l"oxydation incomplète du substrat. Cette réaction ne fait pas intervenir la chaine de transporteurs

d"électrons. Elle se distingue de la respiration par son faible rendement énergétique et la diversité des

produits d"oxydation.

I.3.2.2.a. La fermentation anaérobie

En anaérobiose, Saccharomyces cerevisae est privée de son accepteur final d"électron qui est

l"oxygène. Les coenzymes d"oxydoréduction, comme le NADH+H +, ne peuvent donc plus être réoxy

dés. La cellule doit donc utiliser un autre accepteur final d"électron qu"elle doit fabriquer à partir

de son substrat. Pour Saccharomyces cerevisae il s"agit principalement de l"acétaldéhyde. La

réduction de l"acétaldéhyde en éthanol permet ainsi de maintenir l"équilibre rédox en réoxydant le

NADH+H+ produit au cours de la glycolyse.

L"équ

ation bilan de la réaction de fermentation du glucose par Saccharomyces cerevisae est : C

6H12O6 + 2 Pi + 2 ADP 2 C2H6O + 2 CO2 + 2 ATP (eq2)

Glucose + Phosphate inorganique+ Adénosine diphosphate Ethanol + Dioxyde de carbone + énergie

Saccharomyces cerevisae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces

cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces

cerevisiae

Saccharomyces

cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisae

Saccharomyces cerevisae

Saccharomyces

cerevisiae

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Chapitre I : Etude bibliographique

ADEME Page 52 sur 177 I.3.4. Les procédés de fermentation

I.3.4.1. Un système multiphasique

Comme illustré figure 12, les fermentations sont des procédés multiphasiques. Ceci pose des

c ontr aintes biologiques et physico-chimiques. Les cellules vivantes constituent un système organisé

avec des entrées de substrats, d"oxygène, de facteurs de croissance et des sorties de déchets comme

le CO

2 et l"éthanol.

La pa

rtie active de la matière vivante, que constituent les protéines, nécessite un environnement

adéquat du point de vue du pH, de la température, de la force ionique, de la présence de cofacteurs

enzymatique et d"effecteurs enzymatiques. Ceci permet le développement, la maintenance et la

reproduction des cellules dans de bonnes conditions.

Les systèmes multiphasiques posent des problèmes de transferts entre chacune des phases, ce qui

entraine, lors de leurs mises en oeuvre à grande échelle, l"hétérogénéité du milieu.

Figure 12: La fermentation: un système triphasique I.3.4 .2. Les modes de conduites de fermentations

I.3.4.2.a. Les cultures discontinues

La fa

brication d"éthanol peut être réalisée à l"aide de procédés discontinus, aussi appelés batch, dans

des bioréacteurs de grands volumes, de l"ordre de 500 m3 (Schmid, 2005). Les cultures discontinues

const

ituent des systèmes clos pour la phase liquide. Normalement, il n"y a pas d"addition d"éléments

au milieu et la culture se développe jusqu"à ce qu"il y ait carence d"au moins un nutriment essentiel ou

jusqu"à ce qu"une modification importante de l"environnement (pH, accumulation de produits

toxiques...) bloque la croissance. Cependant, il est possible d"agir sur le milieu de fermentation en

régulant par exemple le pH ou le niveau de mousse, le système n"est donc pas totalement clos.

Ces types de cultures n"ont pas des rendements constants tout au long du procédé car la composition

du milieu évolue au cours de la fermentation. Les cultures en batch imposent des temps morts lors du

remplissage et de la vidange des cuves. De plus il est nécessaire de stériliser l"installation entre

chaque fermentation. e

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

4°C4°C

a Nf xx x x

Intensification de la brique " fermentation alcoolique » de substrats betteraviers pour la production d"éthanol 10/2012

Chapitre III : Résultats et discussion

ADEME Page 84 sur 177

Figure 24: Schéma de la cuverie du site n°3. Les déb its indiqués sont en rouge sous les cuves

corr e spondent aux temps de rétention dans chaque cuve. 1h

1,801,95

-2 -1 0 1 -2 -1 0 2,10 2,25 1 1 0 -12 1 B A

1,801,95

-2 -1 0 1 -2 -1 0 2,10 2,25 1 1 0 -12 1 B A

1,41,61,8

-2 -1 0 1 -2 -1 0 2,0 -2 1 1 0 -1 1 C A

1,501,75

-1 0 1 -1 0 2,00 -2 2 1 0 -1 1 C B 1314
-2 -1 0 1 -2 -1 0 15 1 1 0 -12 B A 10 12 -2 -1 0 1 14 1 0 -1 -2 1 C A 13 14 -1 0115
-2 2 1 0 -1 1 C B

ActAlto

Bajo

1,0000DÓptimo

d = 1,0000Máximo Ypord y = 2,28811,0000

ConvenienciaCompuesto

-1,68201,6820 -1,75361,9934 -1,57141,5714 BCA [-1,5714][1,9934][-1,6820]

ActAlto

Bajo

1,0000DÓptimo

d = 1,0000Máximo Yeth y = 15,78771,0000

ConvenienciaCompuesto

-1,68201,6820 -1,75361,9934 -1,57141,5714 BCA [-1,5714][-1,7536][-1,6820]

ActAlto

Bajo

1,0000DÓptimo

d = 1,0000Máximo Ypord y = 2,2881 d = 1,0000

Máximo

Yeth y = 15,42551,0000

ConvenienciaCompuesto

-1,68201,6820 -1,75361,9934 -1,57141,5714 BCA [-1,5714] [1,9934][-1,6820]

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

X Angel Yeast Ethanol Red Hirondelle bleue

44,0 42,2 10,0 9,0 3,6 3,5 1,5 1,4 0,1 0,1

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces

cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

v v

Saccharomycescerevisiae

Saccharomycescerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisae

Saccharomyces

cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces

cerevisiae 113,

Saccharomyces cerevisiae

Brettanomyces

Re-evaluation of

some organic chemicals, hydrazine and hydrogen peroxide : part 1.

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces

cerevisiae

Saccharomyces

cereisiae

Saccharomyces carlsbergensis,

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces uvarum

Saccharomyces cerevisae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisae,

Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces

cerevisiae

U.N.G.D.A

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