[PDF] TP 7 Histologie Les techniques de MO et de ME sont utilisées en





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PRÉPARATION DE TISSUS POUR INCLUSION ET COUPE

COUPE PARAFFINE. Nous prenons les échantillons déjà fixés et en cassette dans l'alcool. À préparer avant tout prélèvement : - Les tissus seront fixés 



Aperçu des principales colorations histologiques et intérêt pour le Aperçu des principales colorations histologiques et intérêt pour le

Les coupes du bloc de paraffine sont réalisées avec un microtome permettant des bains) l'épaisseur de coupe du tissu (trimming adéquat). Chaque étape ...



PREPARATION DUNE LAME HISTOLOGIQUE PREPARATION DUNE LAME HISTOLOGIQUE

prélevée est rigide en présence de paraffine solide dans l'espace intracellulaire de chaque cellule composant le tissu. OU. 7. Confection des coupes 



Actualisation de la technique complète des coupes à la paraffine Actualisation de la technique complète des coupes à la paraffine

Certains techniciens ajoutent parfois de la cire d'abeille car elle confère à la paraffine une souplesse qui améliore la facilité de coupe et l'adhérence de la 



Microscopie Paraffine en pastilles Histosec® en pastilles Histosec

Les coupes fines de telle sorte forment la condition pour que le tissu puisse être analysé dans un microscope à immersion. Matériel d'echantillons. Matériel 



Université Frères Mentouri Constantine 1 1ère année LMD / TC / SNV

e) Coupe (Microtomie). Le passage du bloc de paraffine dans un microtome Éliminer la paraffine en passant les lames dans des bains de toluène ou de xylène.



08.03.006 f2.0 Sectionnement des tissus enrobés de paraffine et d

1 juin 2012 Les coupes tissulaires sont montées sur des lames pré-refroidies en retournant la lame avec un petit angle par-dessus la coupe comme s'il s' ...



UNE MÉTHODE DIMPRÉGNATION ARGENTIQUE RAPIDE SUR

Nous avons eu du succès avec une méthode très rapide pour coupes à la paraffine dont voici les diverses étapes: 1. Débarassez la coupe de 10 /i de la paraffine 



Les techniques de préparation des coupes pour les microscopies

LES COUPES. Les coupes du bloc de paraffine sont réalisées avec un microtome permettant d'obtenir des tranches de section (coupes histologiques) de 2 à 5 



Microtomie et préparation de coupes en paraffine

Le Leica Paraffin Tape-Transfer SystemTM est recommandé pour obtenir des coupes à partir de blocs difficiles pour lesquels la fixation le traitement ou l' 



PRÉPARATION DE TISSUS POUR INCLUSION ET COUPE

COUPE PARAFFINE. Nous prenons les échantillons déjà fixés et en cassette dans l'alcool. À préparer avant tout prélèvement : - Les tissus seront fixés 



Aperçu des principales colorations histologiques et intérêt pour le

Les coupes du bloc de paraffine sont réalisées avec un microtome permettant d'obtenir des sections (coupes histologiques) de 3 à 5 microns d'épaisseur. Les 



Les techniques de préparation des coupes pour les microscopies

3- Déshydratation (Alcool et Toluène). ? 4- Inclusion (paraffine



08.03.006 f2.0 Sectionnement des tissus enrobés de paraffine et d

1 jui. 2012 Les coupes tissulaires sont montées sur des lames pré-refroidies en retournant la lame avec un petit angle par-dessus la coupe comme s'il s' ...





Présentation PowerPoint

une coupe suffisamment fine d'un bloc de tissu en paraffine pour être observée « in fine » sur lame au microscope. La coupe est une étape fondamentale.



FICHE TECHNIQUE TP HISTOLOGIE - PREPARATION DUNE

prélevée est rigide en présence de paraffine solide dans l'espace intracellulaire de chaque cellule composant le tissu. OU. 7. Confection des coupes 



Préparation des tissus : information générale

Préparation des tissus : information générale. Tissus inclus dans la paraffine. - Technique solidifiant les tissus et permettant de confectionner des coupes 



UNE MÉTHODE DlMPRÉGNATION ARGENTIQUE RAPIDE SUR

SUR COUPES A LA PARAFFINE DU TISSU NERVEUX DE Débarassez la coupe de 10 µ de la paraffine par la méthode usuelle c'est-à-dire xylol/alcool.



Actualisation de la technique complète des coupes à la paraffine

qui améliore la facilité de coupe et l’adhérence de la pièce au bloc de fixation (avec mon vieux micro-tome les résultats sont nettement améliorés) Paraffine : 100 g - cire d’abeille : 5 g L‘imprégnation Le remplacement de l’alcool par la paraffine doit se faire lentement



Coupes à la Paraffine

NIST Technical Series Publications

Quels sont les différents types de paraffines ?

Il existe différentes qualités de paraffines qui se différencient par leur point de fusion. Le Paraplast est une paraffine synthétique qui imprègne bien les pièces. Régler la température du bain de paraffine en fonction de ce point de fusion (45-70°) La durée de l'inclusion dépend de la taille de la pièce .

Comment faire des coupes en paraffine ?

Pour les échantillons enrobés en paraffine, les coupes obtenues sont d’abord placées dans un bain-marie (dépliement du tissu) puis retirées de l’eau, placées sur une lame et mises à sécher. Stockage : Température ambiante Equipements disponibles sur la plateforme : 2 RM2245 (Leica) & 1 HM350 (MMFrance) Microtomes à congélation

Quelle est l'épaisseur d'une coupe ?

L'épaisseur de ces coupes se situe aux alentours de 4 µ . A cette épaisseur, la résistance des tissus à la pression de l'arête de l'instrument coupant n'est pas suffisante et entraîne des détériorations qui rendent inexploitables les observations qui en résultent.

Quelle est la différence entre l’alcool et la paraffine ?

NB : Il faut se souvenir que si l‘alcool a déjà servi plusieurs fois, la partie inférieure du flacon contient un alcool moins titré. LA PARAFFINE du commerce se présente souvent en granulés, et son point de fusion est toujours pré-cisé (entre 45 et 70°). Le Paraplast est une paraffine de synthèse qui imprègne bien les pièces.

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TP 7 Histologie

Les techniques de MO et de ME sont utilisées en routine pour visualiser les structures. Avec les conseils de Madame Julien. Anatomopathologie . 26000 Valence

Pour rendre visible ce que l'on veut observer, il est nécessaire de mettre en oeuvre des techniques

diverses (préparation des échantillons) que l'on applique au matériel. Pour l'observation en MO

ou en ME, les coupes examinées sont le fruit de procédures techniques qui requièrent plusieurs

étapes successives : fixation, inclusion, coupe, coloration, montage. I Pour la MO : fixation au formol, inclusion en paraffine, colorations standard (hématoxyline-éosine ou HES ou trichrome) La fixation a pour but la conservation des structures et le durcissement des pièces. Elle doit se faire immédiatement après le prélèvement, par immersion du matériel dans un grand volume de liquide fixateur. Les liquides fixateurs les plus utilisés sont le formol ou le liquide de Bouin (mélange de formol et d'acide picrique). La durée de la fixation varie selon le volume des prélèvements (de quelques heures pour un petit fragment biopsique à plusieurs semaines pour un cerveau humain entier). L'inclusion a pour but de permettre la réalisation de coupes fines et régulières. Le milieu d'inclusion le plus utilisé est la paraffine. Comme la paraffine est hydrophobe, le prélèvement doit d'abord subir une déshydratation (par immersion dans des bains d'alcool de degré croissant puis dans des bains de toluène) avant d'être coulé dans un moule contenant de la paraffine fondue par chauffage et devenue liquide, qui infiltre alors toute la pièce. Après refroidissement, on se trouve en présence d'un bloc de paraffine, dur, à l'intérieur duquel la pièce prélevée est incluse. Dans certains cas, on utilise d'autres milieux d'inclusion (celloïdine, résines plastiques, etc.). Les coupes du bloc de paraffine sont faites avec un microtome permettant de réaliser des tranches de section (coupes) de 2 à 5 µm d'épaisseur. Les coupes sont recueillies sur des lames de verre.

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Les colorations réalisées sur lames, accentuent les contrastes pour mieux reconnaître les différents éléments de la préparation. Comme les colorants sont en solution aqueuse, les

coupes doivent d'abord subir une réhydratation. Celle-ci est effectuée après déparaffinage

des coupes (par la chaleur et des bains de toluène) en immergeant les lames dans des

bains d'alcool de degré décroissant puis dans l'eau distillée. Les colorations les plus

fréquemment utilisées associent deux ou trois colorants différents : l'Hématoxyline-

Eosine (H.E.) associe l'hématéine qui colore les noyaux en violet et l'éosine les

cytoplasmes en rose ; les colorations trichromiques usuelles sont l'Hématéine-Eosine-

Safran (H.E.S.) par ajout de safran colorant en jaune les fibres de collagène, et le

trichrome de Masson qui associe un colorant nucléaire (hématoxyline), un colorant cytoplasmique et un colorant bleu ou vert colorant les fibres de collagène. De nombreuses colorations spéciales (dites signalétiques) permettent de visualiser différentes structures ou composants des tissus (par exemple, les fibres de réticuline par des colorations argentiques ou les fibres élastiques par l'orcéine). Le montage. Après avoir subi une déshydratation (par bains d'alcool de degré croissant puis bains de toluène), les coupes colorées sont montées entre lame et lamelle avec une

résine synthétique dont l'indice de réfraction est voisin de celui du verre. On dispose alors

d'une " préparation microscopique » (simplement appelée " lame » dans le langage courant) prête à être observée au MO. Remarque :Pour la ME : fixation à la glutaraldéhyde, post- fixation à l'acide osmique, inclusion en épon, contraste par l'acétate d'uranyle et le citrate de plomb La technique dite " standard » de ME est analogue dans ses principes à celle de MO, mais les modalités précises diffèrent. La fixation se fait habituellement dans de la glutaraldéhyde tamponnée et est suivie d'une post-fixation à l'acide osmique. L'inclusion se fait dans une résine synthétique type Epon ou Araldite, après que les fragments ont été déshydratés dans les alcools et dans l'oxyde de propylène. Les coupes ultrafines des blocs sont réalisées grâce à un ultramicrotome qui permet d'obtenir des coupes ultrafines d'environ 80 nm d'épaisseur. Les coupes sont recueillies sur des grilles de cuivre. Avec le même ultramicrotome, on peut faire des coupes semi- fines, observables en MO et permettant de guider le choix des zones à étudier en ME. Le contraste des coupes s'effectue habituellement avec de l'acétate d'uranyle (contrastant les nucléoprotéines : noyau, nucléole, ribosomes) et des sels de plomb comme le citrate de plomb (contrastant les membranes).

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II Technique de préparation des échantillons

1 Fixation

Mettre la pièce anatomique dans un bain de formol à 10% entre 24h et 48h. (il est préférable de la

laisser 48h).

Il faut veiller à préparer un bain qui représente 10 fois la masse de la pièce à fixer.

Remarque : Formol à 10% en sachant que les solutions du commerce sont à 30%

Prélever un à étudier. Le positionner

2 Préparation avant inclusion : La déshydratation

sachant que la paraffine est très hydrophobe.

Alcool 70° 85° 90° 100°

Temps 10 min 30 min 45 min 1h30

Ensuite mettre dans 3 bains successifs de safsolvent de concentration identique pour laver safsolvent 15 min 30 min 45 min

Mettre dans de la paraffine liquide pour laver les excès de solvant. Pour cela on utilise une étuve

entre 56°C et 60 °C pour garder la paraffine liquide.

Paraffine liquide 1h 1h 1h

Le dernier bain peut durer 1 nuit ffectuer, le lendemain, la coupe avec les étudiants

3 Inclusion/ enrobage

Dans un moule métallique ou jeta à 56°C.

Mettre au fond quelques gouttes de paraffine liquide (Les pinces doivent être chaude pour faciliter cette opération.. Utiliser le bec bunsen).

Mettre

Rajouter de la paraffine liquide

La cassette, puis de nouveau de la paraffine liquide (bain glacé) pour faciliter le démoulage.

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4 Coupe histologique

le microtome o reculer le porte objet au maximum o placer le bloc dans le porte objet sans le fixer o placer le rasoir face gravée vers l'extérieur : e fixer (face à couper dans un plan vertical, parallèle au fil du rasoir, les deux arêtes du bloc les plus longues horizontalement o dégrossir à la main o régler l'épaisseur des coupes (5 microns) o mettre le cliquet o couper

DIFFICULTES

o Les coupes ne se font pas vérifier le cliquet, l'inclinaison du rasoir, la fixation du porte objet o coupes striées essuyer le rasoir ou le déplacer o coupes irrégulières vérifier la fixation du rasoir et du porte-objet La cire doit être assez froide, pour obtenir un ruban. =>Mettre le bloc de paraffine au congélateur si besoin ou utiliser une bombe cryolab qui refroidit la surface de la cire.

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5 Fixation de la coupe sur la lame

Sur une plaque chauffante maintenant une température de 50 °C.

On place une lame sur laquelle on dépose une solution eau distillée albuminé à 1% en veillant à

faire un bien glisser sur la lame. stick on On dépose alors la coupe histologique sur la lame.

On égoutte la lame , en renversan.

On place la lame droite pour bien faire sécher. Par exemple sur un sopalin. Puis on place la lame dans une étuve à 56°C pendant 1 h.

Cela perm

coupe sur la lame. - une épaisseur constante. - pas de pli, pas de bulle - pas de détérioration de la coupe - pour que la

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6 Déparaffinage

Puis il est né en veillant à ne pas enlever la coupe de la lame) Par passage de la lame dans 2 bains de toluène. (en veillant à la propreté du dernier bain) safsolvent 2 min 2 min

Alcool 100° 80° 50°

Temps 2 min 2 min 2 min

On place la lame dans un bain du robinet pendant quelques secondes. On place la lame dans un bain e pendant quelques secondes

7 Coloration à HE

Bain à 5 min

Rinçage eau du robinet 3 min

Rinçage eau distillée passage

Bain à r le cytoplasme en rose 3 minutes

Rinçage eau distillée passage

1 min 1 min

Laisser tremper la lame dans le ---------

plusieurs semaines dans le toluène.

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8 Montage

On place une goutte de safemont

soigneusement avec une pince.

Critères de réussite .

Pas de pli sur la lame.

Pas de bulle au montage.

Bon contraste au niveau des noyaux.

Coupe complète de la pièce de l.

Epaisseur régulière dans la coupe

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