Guide du débutant: Cytométrie en flux - Interchim
Relier de tels fluorochromes à un anticorps ou utiliser des molécules à marquage fluorescent qui se lient à des composants cellulaires
CAMPUS VETERINAIRE DE LYON
Interchim Innova Biosciences and Chromocyte (no date) Guide du débutant : cytométrie en flux. Available at: https://www.interchim.fr/cat/Guide%20du%20debutant-.
UNIVERSITÉ DORLÉANS Vectorisation de petits acides nucléiques
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Guide du débutant: Cytométrie en flux - Interchim
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ANALYSE DE BIOLOGIE CELLULAIRE
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18 sept. 2017 fonctionnel marquages en cytométrie en flux pour identifier des ... Nous faisons l'hypothèse que les syndromes d'Evans débutant précocement ...
UNIVERSITE DE STRASBOURG
Ecole Doctorale des Sciences de la Vie et de la SantéUnité INSERM U1109
THESEPrésentée pour grade de
Strasbourg
Discipline : Biologie moléculaire et cellulaireSpécialité : Neurosciences
ParLionel Meyer
Contribution des cellules souches de glioblastome à : aspect thérapeutique et développementSoutenue publiquement le 14 octobre 2016
Membres du jury
Directeur de thèse :
Rapporteur externe :
Rapporteur externe :
Examinateur interne :
Dr. Dominique Bagnard, INSERM, Strasbourg
Pr. Marc Sanson, ICM, Paris
Pr. Hervé Chneiweiss, IBPS, Inserm, Paris
Pr. Vincent Lelièvre, INCI, CNRS, Strasbourg
" La science consiste à »Aristote
Remerciements
Avantdu jury pour avoir accepté de juger mes travaux de thèse. Merci aux Professeurs Hervé
t jugements ainsi que vos visions de spécialistes adaptés à mon projet de recherche. Je remercie le Dr. Gertraud Orend, directrice du laboratoire MN3T pour son accueil et pour les nombreux commentaires en réunion et présentations internes, notamment lors de ma préparation au concours des contrats doctoraux. motivation et au extras » pour les TP deneuro. Je prends avec recul la fameuse présentation de février 2013 qui a été une épreuve pour
sexy » sur le papier pour enfin le toucher du doigt presque cinq ans plus tard. Oui, cinq ans depuis le premier stage. Cinq ans de moments conviviaux : ZiziCheng (very gooood
aussi des sorties dans les patelins alsaciens, des repas chez toi, chez moi, avec du vin
naturellement ! Il est certain que je vais bien devoir voler de mes propres aile n dans bien des domaines et Je commence par le Dr. Olivier Lefebvre, merci pour ton importante collaboration sur le projet iMESYS. Tout ce que je peux savoir de la bio mol, ça vient de toi. Ton Padawan a presque fini toujours partant pour lancer une nouvelle construction avec une nouvelle protéine fluo ou unautre antibiotique de sélection. Je connais presque tout le tableau des enzymes de restrictions de
chez NEB. Te souviens-tu de notre course de la mini-prep ? Je ne dévoilerai pas le vainqueur pour les TRES nombreuses discussions, les critiques et les commentaires, mais surtout pour ton regard bienveillant sur mes travaux. Merci à Annick Klein, pour ta bonne humeur permanente, tes nombreuses manips degénotypage des Lama1 monde ! Bon courage pour ta fin de carrière ! Merci à Christiane Arnold
de matériel, je te souhaite de bien profiter de ta retraite ! Au tour de la DB team. Un immense merci à vous tous, anciens et actuelspermis de trouver la motivation de venir les matins dans les moments difficiles, ou alors de
Aurore, dite " Réservée, mais
diablement attentionnée envers tout le monde, tu veux toujours notre bien. Merci pour tes
manips FACS sur les lignées GS horribles et merci de gérer maintenant une bonne partie du labo.
fougueux galopant dans les marais salantsde Camargue vont me manquer. Je te souhaite le meilleur dans ta carrière de duolinkeuse
invétérée !plus le temps à la fin ! Tu es toujours disponible et partante pour aider ou rendre service.
pendant les travaux ! Je te souhaite de bien finir ta thèse, courage, tu parles tellement bien le français après si peu de temps, ça va le faire ! Merci à Coralie, nouvellement baptisée " micromaniaque », pour les bons moments partagés avec toi et pour avoir fait le gardiennage des cellules souches pendant mes absences du labo, même si une partiepassera bien pour ta thèse, que tu arriveras un jour à faire fonctionner un " viro-peptide » et
ouvrir la nouvelle aire de la médecine par les virus de plantes !Merci à Caroline, " Caro » ou " Fraulin Spenly » pour apporter tes connaissances dans
spontanéité ! Merci à Michael, dit " Mika » ou " » pour tout le Van Der Lifestyle au final !Mon collègue de bureau le plus bru
le plus adorable et le plus attentionné ! Derrière ton T-shirt noir à motif noir, surpiqué de noir, se
: des barbecues, péter des saignées dans lebéton indestructible de ta (enfin) maison, jouer avec ta splendide et symétrique fille Ambre,
Merci à Gérard Crémel, comme la Crème avec un -L-, dit " Gégé » pour toutes les
discussions, débats, contradictions, jeux de mots, fourche-langues et autres calculs théoriques de
Je crois que les mots me manquent pour qualifier
le Gégé. A mi-chemin entre Le Che et Ferré, tu es le syndicaliste le plus capitaliste de
Peptimimesis
e à Nadjette.Merci à Tristan, dit " Ruppestre
substrat de ténascine-graisse de canard. Même si tu es persuadé que la totalité de la planète a tort, tu as souvent mis les
choses à plat et apporté beaucoup dans les débats scientifiques du labo. Et forcément, tu sais
masculines équivoques partout. Mes remerciements sont joints pour Claire, cela va de soi. Vous avez toujours été là pour moi. Je vous adore ! Merci à Guy, le retraité le plus hyperactif que je connaisse. Je te remercie de tout tonsoutien débordant, de nos échanges concernant les immunos (et le Koehler bordel ! toujours faire
le Koehler merci pour la relecture pointilleuse de mon manuscrit. On a passé de très bons moments en dehors du boulot et je me souviens de nombreuses attentions que tu as pu avoir pour moi ou le -maison sur roues ! Bises ! Je remercie particulièrement Nadège, Alexia, Aurore (avec Pulu, assimilé DBTeam, tant tuas été présent au final) et Laurent. Le quatuor de la mort ! Il faudrait dix pages pour dire tout ce
! Lasource ! On a vécu des moments " oufissimes », à se faire des prises de judo avec Lando dans le
bureau, des limaces dans les oreilles avec Ur, des moments de " frachitude » ultimes avec le duoNadégou-Alexito
aile. Vous avez été le rayon de soleil du labo et vous voir partir les uns après les autres a été très
rien, nous continuons à nous voir et à dormir les uns chez les autres et je sais que nous ne perdrons pas ce lien spécial que nous avions tissé ! Je vous embrasse tous. Merci à tous mes amis, les groupes de la fac, du FEC, de Cernay su être si patient, compréhensifs face à monmutisme social de fin de thèse. Vous avez tous été présents malgré tout, pour sortir, boire de
nombreux verres, faire la fiesta et tester de nouveaux restaurants ! Je vous embrasse tous ! a famille Fritz et la myriade de cousins, cousines. Merci à vous anie et reconnaissant. Je vous souhaite du bonheur dans la nouvelle maison avec le bébé à venir !cru en moi pendant toutes ces années de fac et de doctorat. Vous avez tout fait et donné pour moi,
-retour pour me débloquer les cervicales ! Vous coûte, dans tous les moments, les pires comme les meilleurs. Je vous aime. Merci à mes grands- parents, mon oncle et ma tante, pour votre bienveillance, votre enthousiasme que je ressentais i également une pensée émue pour mes grands-parents maternels qui auraient tant voulu voir ce que je suis devenu. Merci à Justine, membre de la DB Team, mais pas que Tu es essentielle pour moi et je passe des moments exceptionnels et indispensables à tes côtés (CLDQ). Tu as su me supporterdernières semaines à compléter des manips in extremis. Quant aux prévisions " rousseliennes »
comme tu le dis, si tu te le demandes encore, la réponse est oui. 1TABLE DES MATIERES
TABLE DES MATIERES..................................................................................................................................................... 1
LISTE DES FIGURES ET TABLEAUX ............................................................................................................................ 5
LISTE DES ABREVIATIONS ............................................................................................................................................ 7
RESUME DE THESE ........................................................................................................................................................... 9
INTRODUCTION ............................................................................................................................................................. 11
1. Généralités sur les cellules souches .................................................................................................................. 11
1.1 Essor de la recherche sur les cellules souches ....................................................................................... 11
1.2 Caractéristiques des cellules souches ........................................................................................................ 13
1.2.1 ............................................................................................................................. 13
1.2.2 La différenciation ...................................................................................................................................... 14
1.3 Classification des cellules souches .............................................................................................................. 15
1.3.1 Les cellules souches totipotentes ....................................................................................................... 15
1.3.2 Les cellules souches pluripotentes .................................................................................................... 16
1.3.3 Les cellules souches multipotentes.................................................................................................... 16
2. Les cellules souches neurales .............................................................................................................................. 18
2.1 Composition cellulaire du système nerveux ........................................................................................... 18
2.2 Neurogenèse embryonnaire .......................................................................................................................... 19
2.3 Les cellules souches dans les niches neurogéniques ........................................................................... 21
2.3.1 .................................................... 21
2.3.2 Les niches neurogéniques adultes ..................................................................................................... 21
2.3.3 Régulateurs extrinsèques et maintien des cellules souches neurales ................................. 26
2.4 Les marqueurs des cellules souches neurales ........................................................................................ 28
2.4.1 Nestine ........................................................................................................................................................... 30
2.4.2 CD133 (Prominine-1) .............................................................................................................................. 30
2.4.3 Sox2 ................................................................................................................................................................. 31
2.4.4 Autres marqueurs ..................................................................................................................................... 32
2.5 Différenciation des cellules souches neurales ........................................................................................ 34
2.5.1 ........................................... 34
2.5.2 Genèse et marqueurs des cellules différenciées ........................................................................... 37
3. Glioblastome et cellules souches tumorales .................................................................................................. 41
3.1 Généralités et épidémiologie des glioblastomes .................................................................................... 41
3.1.1 Les tumeurs du système nerveux ........................................................................................................ 41
23.1.2 Epidémiologie du glioblastome ............................................................................................................ 42
3.2 Symptômes, diagnostic ..................................................................................................................................... 42
3.3 Classifications des gliomes.............................................................................................................................. 43
3.3.1 Classifications histopathologiques et cliniques ............................................................................. 43
3.3.2 Les signatures moléculaires des glioblastomes ............................................................................. 45
3.4 Les cellules souches de glioblastome (CSG) ............................................................................................. 46
........................................................................... 473.5 Régulation des CSG par la niche microenvironnementale ................................................................. 57
3.6 Traitements des glioblastomes et thérapies anti CSG ......................................................................... 60
3.6.1 Traitements classiques du glioblastome .......................................................................................... 60
3.6.2 Résistance des CSG aux traitements ................................................................................................... 61
3.6.3 Thérapies ciblées contre les CSG.......................................................................................................... 62
3.6.4 Le cas particulier des peptides inhibiteurs transmembranaires............................................ 65
4. Transductions virales et technologies de suivi des cellules souches par fluorescence ............... 71
4.1 Transduction de matériel génétique dans les cellules souches ....................................................... 72
......................................................................................................... 72
4.1.2 Transduction de cellules souches par vecteurs viraux. .............................................................. 74
................................................................................... 774.2 Les modèles de suivi du lignage cellulaire par fluorescence ............................................................ 78
4.2.1 Marquage cellulaire par expression de rapporteurs fluorescents contrôlés ................... 79
4.2.2 Marquage cellulaire par rapporteurs multicolores ..................................................................... 80
OBJECTIFS DE LA THESE ........................................................................................................................................... 83
MATERIELS ET METHODES ..................................................................................................................................... 85
1. Animaux ........................................................................................................................................................................ 85
2. Culture cellulaire ....................................................................................................................................................... 85
2.1 Cellules souches neurales................................................................................................................................ 85
2.2 Cellules souches de glioblastome ................................................................................................................. 86
2.2.1 Culture de lignée de cellules souches de glioblastome .............................................................. 86
2.2.2 Dérivation de cellules souches tumorales à partir de glioblastome .................................... 87
2.3 Cultures de cellules neuronales et endothéliales .................................................................................. 88
3. Solubilisation et traitements avec les peptides MTP ................................................................................. 88
4. Tests fonctionnels ..................................................................................................................................................... 89
4.1 Test de prolifération par mesure MTS ....................................................................................................... 89
4.2 Test de formation de sphères ........................................................................................................................ 90
4.3 Différenciation des cellules souches sur substrat bidimensionnel ................................................ 90
34.4 Co-culture de tranches organotypiques de cerveau et de cellules souches ............................... 91
5. Le ......................................................................... 94
5.1 Principe ................................................................................................................................................................... 94
5.2 Constructions génétiques ................................................................................................................................ 95
5.2.1 Vecteur lentiviral de base ...................................................................................................................... 95
5.2.2 Construction neuronale MAP2-mCherry hPGK Puromycine .................................................. 95
5.2.3 Construction astrocytaire GFAP-GFP hPGK Blasticidine .......................................................... 96
5.2.4 Construction oligodendrocytaire CNP-CFP hPGK Néomycine ............................................... 96
5.2.5 Construction endothéliale Tie2-mVenus hPGK Zéocine ........................................................... 97
5.3 Production des particules lentivirales par transfection de cellules HEK293T ......................... 97
5.4 Transduction des cellules par les lentivirus ............................................................................................ 99
6. Xénogreffes de cellules souches ....................................................................................................................... 100
6.1 Greffes hétérotopiques .................................................................................................................................. 100
6.2 Greffes orthotopiques .................................................................................................................................... 101
6.3 Coloration histologique des cerveaux au réactif de Giemsa .......................................................... 101
7. Analyse des marqueurs cellulaires par immunomarquage .................................................................. 102
7.1 Préparation des cellules souches sur coupe cryostat ....................................................................... 102
7.2 Immunocytochimie sur cellules souches différenciées sur lamelles. ........................................ 103
8. des ARNm par RT-qPCR ..................................................................................... 104
9. ................................................. 105
10. .................................................................................. 105
11. Tests statistiques ........................................................................................................................................... 106
RESULTATS .................................................................................................................................................................... 108
PARTIE I : Obtention et caractérisation de cellules souches de glioblastome .................................... 109
1. Obtention de CSG à partir de cellules de GBM ............................................................................................. 110
2. Les CSG expriment des marqueurs de CS et des marqueurs de différenciation....................... 111
3. Les CSG sont enrichies en marqueurs de cellules souches. ................................................................... 116
4. Les CSG sont multipotentes et tumorigéniques. ......................................................................................... 119
PARTIE II peptides MTP-NRP1 et MTP-PlexA1 ...................................... 122.................................................................................................... 122
2. Les récepteurs neuropiline-1 et plexine-A1 sont surexprimés dans les CSG ................................. 122
3. Les peptides MTP-NRP1 et MTP-PlexA1 inhibent la croissance des CSG in vitro. ..................... 124
4. MTP-NRP1 et MTP-PlexA1 ont des effets opposés sur la tumorigenèse des CSG. ....................... 127
PARTIE III inductible iMESYS..................... 1311. Elaboration et validation des vecteurs plasmidiques et des vecteurs lentiviraux ..................... 131
42. ............................................................. 133
3. Validation du système iMESYS dans des cellules souches neurales humaines ............................ 135
4. Le système iMESYS neural est spécifique dans des CSG ........................................................................ 141
5. Suivi de la différenciation de CSG en direct avec le système iMESYS ............................................... 142
6. Le système iMESYS peut .... 146
7. Validation du rapporteur iMESYS Tie2--différenciation .. 148
DISCUSSION ET PERSPECTIVES ............................................................................................................................ 152
1. Production et caractérisation des CSG établies ......................................................................................... 152
-NRP1 et MTP-PlexA1 sur les CSG ...................................... 1572.1 Les peptides transmembranaires inhibent la croissance des CSG in vitro. .............................. 157
2.2 Les peptides MTP-NRP1 et MTP-PlexA1 ont des effets opposés sur les CSG in vivo. .............. 159
3. Développement du système iMESYS pour le suivi de la différenciation des cellules souches 163
3.1 Choix et critiques du vecteur lentiviral................................................................................................... 164
.............................................. 1653.3 Le système iMESYS révèle une expression mosaïque des marqueurs de différenciation dans
les CSG ............................................................................................................................................................................... 169
3.4 Le système iMESYS est polyvalent et peut êtr ......................... 170
BIBLIOGRAPHIE ........................................................................................................................................................... 173
ANNEXES ......................................................................................................................................................................... 201
Annexe 1: Résumé des publications et communications ............................................................................. 201
Annexe 2 : Publications parues ou soumises .................................................................................................... 203
5LISTE DES FIGURES ET TABLEAUX
Figure 1 : Histogramme représentant le nombre de publications par an référencées sur Pubmed ..................... 12
Figure 2 : Concepts de division symétrique et asymétrique lors du renouvellement des cellules souches. ........ 14
Figure 3 : Evolution de la capacité de différenciation des cellules souches dans le temps. ...................................... 15
Figure 4 : Processus de mise en place des tissus à partir des cellules souches mésenchymateuses (CSM) ......... 17
Figure 5 : Les cellules souches neurales dans les niches neurogéniques adultes de mammifères. I ...................... 22
Figure 6 : Illustration des flux de migration neuronaux en pr ........................ 23Figure 7 : La niche neurogénique sub-ventriculaire, les types cellulaires et le lignage des CSN ........................... 24
Figure 8 : La niche neurogénique sub-granulaire, les types cellulaires et leur lignage ............................................ 25
Figure 9 : laires des progéniteurs neuraux .... 29 Figure 10 : neurales humaines en culture 2D ............ 30Figure 11 : Propriétés fonctionnelles des cellules souches et des progéniteurs neuraux .......................................... 33
Figure 12 : Voies de différenciation classiques des CSN. ........................................................................................................ 34
Figure 13 : Les progéniteurs neuraux suivent un développement séquentiel in vivo et in vitro ............................ 36
Figure 14 : Représentation schématique du développement et de la maturation des oligodendrocytes ........... 40
Figure 15 : " Heatmap ............. 46
Figure 16 : G à partir de cellules neurales ............................................................. 49
Figure 17 : Hypothèse de la contribution conjointe des CSN et d ............................ 49Figure 18 : Illustration des modèles des cellules souches de glioblastome (CSG) ........................................................ 51
Figure 19 : Caractéristiques des sous-populations cellulaires des GBM. ......................................................................... 53
Figure 20 : Vues schématiques de la niche micro-environnementale et vasculaire des CSN et des CSG. .......... 58
Figure 21 : Représentation de la résistance des CSG aux traitements ............................................................................ 61
Figure 22 : Plateformes de signalisation des récepteurs neuropiline-1, plexines et VEGFRs .................................. 67
Figure 23 : Représentation de la structure en hélice du domaine transmembranaire (TMD) de NRP1. ............ 68
Figure 24 : Schéma de la transfection par des polyéthylènimines (PEI) ......................................................................... 74
Figure 25 fection par des vecteurs viraux ............................................................. 75
Figure 26 rus (comprenant les lentivirus) ............... 76Figure 27 : Concept de la technologie MADM .............................................................. 81
Figure 28 : Divisions des cellules initiales de CSG cultivées en condition de neurosphères...................................... 87
Figure 29 : Stratégie de synthèse des peptides thérapeutiques .......................................................................................... 89
Figure 30 : Principe de fonctionnement du système iMESYS. .............................................................................................. 94
Figure 31 : Carte du plasmide portant les séquences codantes de vecteur lentiviral. ................................................ 95
Figure 32 duction de vecteurs lentiviraux .............................. 98Figure 33 : Protocole de greffe hétérotopique de CSG en sous-cutané ........................................................................... 100
Figure 34 : Caractérisation des cellules U 118 et établissement de leurs CSG dérivées ........................................... 112
Figure 35 : Caractérisation des cellules U 373 et établissement de leurs CSG dérivées. .......................................... 113
Figure 36 : Caractérisation des cellules HB 14 et établissement de leurs CSG dérivées. ......................................... 114
Figure 37 : Caractérisation des cellules HB 30 et établissement de leurs CSG dérivées .......................................... 115
Figure 38 : Caractérisation de la lignée de CSG NCH644. ................................................................................................... 116
Figure 39 : GBM et dans leurs CSG ........................... 117 Figure 40 : Analyse par RT- cellules souches et des gènesde différenciation. ................................................................................................................................................................................. 118
Figure 41 : Expression des marqueurs de différenciation dans les CSG nch644 et GSHB 30 cultivées en
présence de sérum et sans facteurs de croissance. .................................................................................................................. 120
Figure 42 : Mise en évidence de la tumorigénicité des cellules NCH644 et GSHB30 ................................................. 121
Figure 43 : Expression des récepteurs neuropiline-1 et plexine-A1 dans les CSG et les CSNh ............................... 123
Figure 44 : Les récepteurs NRP-1 et plexine-A1 sont surexprimés dans la lignée de CSG NCH644 .................... 124
Figure 45 : Les peptides MTP-NRP1 et MTP-PlexA1 ont un effet anti-prolifératif spécifique des CSG mais pas
des CSN. ..................................................................................................................................................................................................... 125
6Figure 46 : Les peptides MTP-NRP1 et MTP-PlexA1 inhibent la formation de gliomasphères ............................. 126
Figure 47 : Le peptide MTP-NRP1 inhibe la croissance des tumeurs sous-cutanées de CSG ................................. 127
Figure 48 : Le peptide MTP-NRP1 inhibe la croissance des tumeurs intracérébrales issues de CSG .................. 128
Figure 49 : Le peptide MTP--cutanées de CSG ................................... 129Figure 50 : Génération des constructions plasm ................................................ 132
Figure 51 : Validation par contrôle négatif du système de vecteurs lentiviraux iMESYS dans des cellules COS-
7 ................................................................................................................................................................................................................... 133
Figure 52 : Les cellules neuronales SHS-Y5Y expriment uniquement le rapporteur fluorescent iMESYS MAP2-
mCherry. ................................................................................................................................................................................................... 135
Figure 53
neurales humaines maintenues en culture indifférenciée .................................................................................................... 136
Figure 54
fluorescents iMESYS dans des cellules souches neurales humaines .................................................................................. 137
Figure 55 : Les CSN humaines expriment la construction GFAP-GFP dans des conditions de différenciation
...................................................................................................................................................................................................................... 139
Figure 56 : Les CSN humaines expriment la construction MAP2-mCherry dans des conditions dedifférenciation. ....................................................................................................................................................................................... 140
Figure 57 .................... 141
Figure 58 : Suivi de la différenciation de CSG avec le système iMESYS triple .............................................................. 143
Figure 59 : Les CSG expriment une mosaïque de rapporteurs iMESYS après 5 jours de différenciation. ......... 145
Figure 60 ......... 146
Figure 61 : Induction des rapporteurs iMESYS dans un modèle de co-culture de CSG sur des tranches de
cerveau. ..................................................................................................................................................................................................... 147
Figure 62 : Les cellules endothéliales humaines HUVEC expriment uniquement le rapporteur fluorescent
iMESYS Tie2-mVenus. .......................................................................................................................................................................... 149
Figure 63 : Les cellules NCH644-Tie2-mCherry se transdifférencient et expriment le rapporteur fluorescent
mVenus dans le matrigel après 7 jours. ....................................................................................................................................... 150
Tableau 1 : 32
Tableau 2 : Tableau présentant les différents milieux de culture utilisés in vitro. ...................................................... 93
Tableau 3 : Liste des vecteurs lentiviraux produits et utilisés pour transduire les cellules iMESYS ..................... 99
Tableau 4 -striatale de cellules chez
la souris adulte. ...................................................................................................................................................................................... 101
Tableau 5 : Tableau des anticorps primaires utilisés en immunocytochimie. ............................................................ 103
Tableau 6 : Tableau des anticorps secondaires. ...................................................................................................................... 104
Tableau 7 : Liste de la provenance des lignées de CSG utilisées dans cette étude ..................................................... 109
Tableau 8 : Synthèse de la caractérisation des lignées parentales et des CSG dérivées. ......................................... 110
Tableau 9 : Détail des pourcentages de cellules exprimant les marqueurs de cellules souches et dedifférenciation dans les lignées ....................................................................................................................................................... 117
7LISTE DES ABREVIATIONS
ADAM (A desintegrin and metalloprotease) Métalloproteinase et désintégrine de la matriceAR : Acide rétinoïque
ATRA (All Trans Retinoic Acid) : Acide rétinoïque tout trans bFGF (basic fibroblast growth factor) : Facteur de croissance de fibroblaste basiqueBHE : Barrière hémato-encéphalique
BMP : (Basic Myelin Protein) protéines basiques de la myéline CFP (Cerulean Fluorescent Protein) : Protéine fluorescente céruléan CMRA (Cell Tracker) : Chlorométhyl-rhodol-acétate, sonde cellulaire cytoplasmique.CNP --cyclic-nucléotide--phosphodiestérase
CPOCSC : Cellule souche cancéreuse
CSG : Cellule souche de glioblastome
CSM : Cellule souche mésenchymateuse
CSN : Cellule souche neurale
GFP (Green Fluorescent Protein) : Protéine fluorescente verteDAPI -2-phényl indole, marqueur intercalent de
DCX : Doublecortine
EGF (Epidermal Growth factor) : Facteur de croissance épidermal EGFR (Epidermal Growth Factor Receptor) : Récepteur au facteur de croissance épidermal EMT : Transition épithélio-mésenchymateuseES : Cellule souche embryonnaire
FBSGBM: glioblastome (astrocytome de grade IV)
GBSS GFAP (Glial fibrillary acid protein): Protéine acide gliofibrillaire HBSS HGFR (Hepatocyte growth factor receptor) : Récepteur au facteur de croissance hépatocytaire iPSC (induced Pluripotent Stem Cell) : Cellule souche pluripotente induiteLDS : Lithium dodécyl sulfate
MAP2 (Microtubule associated protein 2) : Protéine associée aux microtubules de type 2, spécifique de la voie neuronale.
MMP (Matrix metalloprotease) : Métallo-protéinase de la matrice MTP : Peptide thérapeutique ciblant le domaine transmembranaireNFL : Neurofilament
NG2 : Antigène neuro/glial 2
NRP1 : Neuropiline-1
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