[PDF] Rappel Détermination des conditions (amorces, t°C d



Previous PDF Next PDF







TD 4b: PCR - Institut national de la recherche agronomique

Exercice n°7 Hybridation amorce-matrice Choix de la température – Tm: t° où 50 de l’ADN est double brin la PCR quantitative 96 Replicates -1 00E-01 4



Rappel Détermination des conditions (amorces, t°C d

PCR et séquençage: une amorce matrice + dNTP 1 Dénaturation 95-96°C 2 Hybridation 50-55°C 3 Polymérisation 60-70°C Exercice n°33 quantité ADN total



Extraction d’ADN, PCR et séquençage de l’ADN

oligonucléotide (amorce) complémentaire à une partie du fragment d’ADN à séquencer L’élongation de l’amorce est réalisée par le fragment de Klenow (une ADN polymérase I dépourvue d’activité exonucléase 5’→3’) et maintenue par des ADN polymérases thermostables, celles qui sont utilisées pour la PCR



Concevoir des amorces pour la réalisation d’une PCR Primer 3

Concevoir des amorces pour la réalisation d’une PCR Primer 3 version 0 4 0 Groupe Formation Action – Académies de Besançon, Nancy-Metz, Strasbourg 2011-2014 Développer les usages du numérique dans l’enseignement des biotechnologies au lycée 1/2 Primer 3 permet de proposer des couples d’amorces adaptés à la réalisation d’une PCR



Fiche astuce : déterminer les amorces à utiliser pour

Pour résoudre ce genre d’exercice plus rapidement vérifiez bien que les amorces sont écrites dans le sens 5’ - 3’ Si ce n’est pas le cas, écrivez dans le sens inverse pour avoir l’amorce dans le bon sens A savoir que pour le Pr Couderc la première amorce proposée correspond à l’amorce 1 et la deuxième amorce à l’amorce 2



CORRIGE DU 1er CONTROLE CONTINU - sorbonne-universitefr

Q 7: Des amorces de 20 nucléotides sont utilisées pour cette PCR Donner les séquences des oligonucléotides amorces qui vous permettront d'amplifier ce fragment d'ADN 100-750 par PCR (les nucléotides en gras et soulignés indiquent les bornes du fragment d'ADN désiré) Précisez l'orientation 5'-3' des ces oligonucléotides



Biologie Moleculaire-2013 http://mysitescienceuottawaca

Exercice 6 13 févr Projet I : Mutagénèse dirigée de LacZ Criblage par PCR des transformants Analyse des produits du PCR de colonies Repiquage sur X-Gal Projet III: Empreintes génomiques SEMAINE D’ÉTUDE 17-23 févr Exercice 7 27 fév Projet IV : Contrôle transcriptionnel du gène Mel1



Monitoring CML patients by RQ-PCR - NGRL

of pcr testing Some look at 10,000 cells, some look at 1 million The bigger the sample size, more sensitive is the test There is no universal standard The trick is to go on testing at one particular machine and achieve their zero and mantain it You must ask your doctor what number they consider pcr negative Rgds, Anjana



Examen final BIO1101 – Section à développement

PCR les séquences obtenues afin d’y détecter, ou non, la présence d’un transcrit correspondant à votre séquence d’intérêt Dans cette expérience, vous utilisez les deux amorces suivantes: 5’-ggtggggcaggcgga-3’ 5’-ccctagttgcagtag-3’

[PDF] valeur de l'information définition

[PDF] les caractéristique de l'information

[PDF] la valeur de l'information dans une entreprise

[PDF] telecharger mapinfo 7.5 gratuit

[PDF] valeur informationnelle

[PDF] telecharger mapinfo gratuit

[PDF] la valeur et l'information finance

[PDF] régulation de température pdf

[PDF] régulation de température cours

[PDF] systeme de regulation de temperature

[PDF] schema electronique regulateur de temperature

[PDF] régulation de température d'un four

[PDF] régulateur de température wikipédia

[PDF] grandeur réglée

[PDF] regulateur de temperature avec pic

1

TD2: PCR

Rappel

Détermination des conditions (amorces, t°C d'hybridation)

RT-PCR

PCR et séquençage

PCR quantitative

Module 9: B. Brunel

Septembre

2007
2 Le principe de la PCR (rappel) = amplification génique c lonage in vitro

» 100

pb-3 k b max 5 kb (standard), long PCR kits ---> 35 Kb

Kary Mullis, prix nobel 1993

outil incontournable avantages: simple, rapide, très sensible, peu de matériel, peu de purification 3 4

Programmation d'un thermocycleur pour PCR:

4 3 2 1

1. Dénaturation

2. hybridation

3 . polymérisation

95°C

d es amorces

72°C

Thyb?

4. nombre de cycles: 20-40

5

Elaboration des

a morces

Détermination

de la taille optimale des amorces

Exercice

n°7 A noter: longueur des amorces pour une amplification spécifique Choix des s

équences

des amorces

Exercice

n°8a

Savoir déterminer les amorces sens et antisens

6

Détermination

de la T° d'hybridation

Exercices

n°8b

Tm: t°

50% de

l'ADN est double brin

Formule empirique

Tm = 4(G+C) + 2(A+T)

Température d'hybridation:

= min (Tm1, Tm2) - 4 °C Tm diminue de 1 à 1,5°C par % de différence si une base diffère:

1/20 ---> 5%

7

Mésappariement

possible, mais pas n 'importe où (5' = 3')

Vitesse d'élongation: env. 1,5-4 Kb/min

--->1 Kb/min

Eviter bases complémentaires entre amorces

et à l'intérieur de l'amorce (struct secondaire)

Eviter séquences répétées

T° de fusion proche entre amorces

% GC de 40-60 8

Transcriptase inverse

Amplifier

l 'ARN: la RT-PCR 9

PCR et séquençage:

une amorce matrice + dNTP

1. Dénaturation 95-96°C2. Hybridation 50-55°C3. Polymérisation 60-70°Cn= 25 cycles

---> amplification linéaire 10 structure of a dNTP (d

éoxynucléotide)

structure of a dd NTP d id

éoxynucléotide)

O

BASE (A, T, G, C)

HO O P O P O P C O O O O O O O OH O O O O

BASE (A, T, G, C)

O P O P O P C O O O O OH 5' 3' 11 C A G T 12 (Polyacrylamide) 13

Quantifier l'ADN: la PCR quantitative

96 Replicates

-1.00E-01

4.00E-019.00E-011.40E+00

1 6 11 16 21
26
31
36

Cycle Number

Analyse temps réel

Analyse point Final

Detection de fluorescence au

cours d 'une PCR 14

Ex: la chimie Taqman

5'3'5'

5'3'5'

Amorce sens

A m orce anti-sens

Sonde TaqMan

R Q p FRET

Quenching

Quencher

quotesdbs_dbs4.pdfusesText_7