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UNIVERSITE DE HAUTE-ALSACE
UNIVERSITE DE STRASBOURG
ÉCOLE DOCTORALE des sciences chimiques
Laboratoire Vigne Biotechnologies et Environnement (LVBE)THÈSE présentée par :
Nicolas THEVENIN
soutenue le : 11 juillet 2016 pour obtenir le grade de : niversité deHaute-Alsace
Discipline/ Spécialité : Biologie des organismes composés de pesticides en mélangeTHÈSE dirigée et encadrée par :
M. BERTSCH Christophe Professeur des Universités, UHA ColmarMme JEZEQUEL Karine, co-encadrante
Maître de Conférences, UHA Colmar
M. LOLLIER Marc, co-encadrant Maître de Conférences, UHA Colmar Mme NASSR Najat, co-encadrante Dr, RITTMO Agroenvironnement ColmarRAPPORTEURS :
Mme PATUREAU-STEYER Dominique Directeur de Recherche INRA, LBE Narbonne Mme MIETTON PEUCHOT Martine Professeur des Universités, ISVV BordeauxEXAMINATEURS :
M. FALLA Jaïro
Professeur des Universités, LIEC Vandoeuvre-Les-Nancy M. BOIS Paul Maître de Conférences, UDS Strasbourg Mme JEZEQUEL Karine, co-encadrante Maître de Conférences, UHA Colmar INVITES M. LOLLIER Marc, co-encadrant Maître de Conférences, UHA Colmar Mme NASSR Najat, co-encadrante Dr, RITTMO Agroenvironnement ColmarAvant-propos
Ce travail de thèse a été co-financé par les partenaires suivants : - Région Alsace, - au Rhin-Meuse, - Critt RITTMO Agroenvironnement.Remerciements
Je voudrais tout dles membres du jury d accepté de relire et Je souhaiterais remercier tout particulièrement mon directeur de thèse Christophe Bertsch et mes co-directeurs de thèse, Karine Jézéquel, Marc Lollier et Najat Nassr, ces recherches avec patience et efficacité. Un grand merci à tous les membres du LVBE (UHA) porté aides et conseils.Je voudrais é -Organique et
Bio- particulièrement Mary-Lorène Goddard, pour le travail analytique réalisé et ses précieux conseils qui ont permis de mener à bien ces travaux.Physico-Chimie de
l'Atmosphère (CNTS/UDS) pour leurs conseils concernant les travaux Je remercie les membres du comité de suivi pour tous leurs conseils : Lionel Limousy, Thierry Lebeau, Claire Riou, Aurélie Grégoire, Gwenaël Imfeld, Matthieu Luthier et tout spécialement Christian Mustin du LIEC (CNRS/ UL) fait découvrir pour sa Je remercie le centre INRA de Colmar pour la fourniture des rafles de maïs, à la coopérative du Comptoir Agricole pour ses conseils sur les produits phytosanitaires avoir accueilli dans ses locauxBioscreen.
Un grand merci également à toutéquipe de RITTMO encouragé et soutenu toutes ces années.A Laure, Aymé et Louis.
SOMMAIRE
INDEX DES ABREVIATIONS ............................................................................................................ 8
DEFINITIONS ...............................................................................................................................11
LISTE DES TABLEAUX ...................................................................................................................12
LISTE DES FIGURES.......................................................................................................................16
INTRODUCTION ...........................................................................................................................23
SYNTHESE BIBLIOGRAPHIQUE
LES PRODUITS PHYTOSANITAIRES. ...............................................................................................29
1.1 LA FORMULATION D'UN PRODUIT PHYTOSANITAIRE. ......................................................................................... 29
1.2 DEVENIR DES MOLECULES DES PRODUITS PHYTOSANITAIRES DANS L'ENVIRONNEMENT. ............................................. 31
1.2.1 La dispersion dans l'enǀironnement. ....................................................................................... 32
1.2.2 La dégradation abiotique. ....................................................................................................... 37
1.2.3 La dégradation par les micro-organismes. ............................................................................... 37
1.3 LA REGLEMENTATION. ............................................................................................................................... 40
1.3.1 Mise sur le marché et suivi réglementaire. .............................................................................. 40
1.3.2 L'utilisation des produits phytosanitaires. ............................................................................... 41
1.3.3 Les moyens de traitement proposĠs par l'arrġtĠ de 2006. ....................................................... 41
1.4 EVALUATION DU DEVENIR DES PRODUITS PHYTOSANITAIRES DANS L'ENVIRONNEMENT. ............................................ 42
1.4.1 Notion d'Ġcotodžicologie. .......................................................................................................... 42
1.4.2 Calcul du risque environnemental. .......................................................................................... 44
2 LES PRODUITS PHYTOSANITAIRES ETUDIES. .........................................................................47
2.1 LES MOLECULES HERBICIDES. ....................................................................................................................... 47
2.1.1 Le dicamba. ............................................................................................................................. 47
2.1.2 Le benoxacor. .......................................................................................................................... 49
2.1.3 Le S-métolachlore. ................................................................................................................... 50
2.1.4 Le glyphosate. ......................................................................................................................... 51
2.1.5 Le diflufenican. ........................................................................................................................ 53
2.1.6 L'isoproturon. .......................................................................................................................... 54
2.1.7 Le nicosulfuron. ....................................................................................................................... 56
2.1.8 La flumioxazine. ...................................................................................................................... 57
2.2 UN INSECTICIDE : LE DIMETHOATE. ............................................................................................................... 59
2.3 LES FONGICIDES. ...................................................................................................................................... 60
2.3.1 L'Ġpodžiconazole. ...................................................................................................................... 60
2.3.2 Le mancozèbe .......................................................................................................................... 62
2.3.3 Le cuivre. ................................................................................................................................. 64
2.4 SYNTHESE DE L'ETUDE DES CARACTERISTIQUES DES MOLECULES PHYTOSANITAIRES ................................................... 66
3 LES PROCEDES DE TRAITEMENTS DES EFFLUENTS PHYTOSANITAIRES. ...................................67
4 LES PROCEDES DE TRAITEMENT EN MILIEU LIQUIDE. ............................................................69
4.1 L'UTILISATION DE BIOSORBANTS DANS LES PROCEDES EN MILIEUX LIQUIDES. ........................................................... 70
4.1.1 Impact de la composition et de la granulométrie du matériau sorbant sur la sorption de
molécules. ............................................................................................................................................. 70
4.1.2 Impact de l'Ġǀolution du matériau sorbant sur ses capacités de sorption. ............................... 71
4.1.3 Impact des propriétés de la molécule et des mélanges sur la sorption. .................................... 72
4.1.4 Capacités de sorption des résidus de maïs. .............................................................................. 74
4.2 L'UTILISATION D'INOCULUM BACTERIEN SPECIALISE. ......................................................................................... 75
4.3 LES PARAMETRES GENERAUy DE MISE EN VUVRE D'UN PROCEDE DE BIODEGRADATION EN MILIEU LIQUIDE. ................... 76
4.3.1 Les conditions d'odžygĠnation. ................................................................................................. 76
4.3.2 Le pH du milieu de traitement. ................................................................................................ 78
4.3.3 Complémentation en nutriments pour la croissance microbienne. .......................................... 78
4.3.4 Temps de séjour ...................................................................................................................... 79
4.3.5 Gestion des résidus solides de traitement ................................................................................ 79
MATERIEL ET METHODES
1 MATERIEL ET TECHNIQUES DE BASE. ....................................................................................84
2 PREPARATION DE L'EFFLUENT MODELE DE PRODUITS PHYTOSANITAIRES. ............................84
3 INOCULUM BACTERIEN. .......................................................................................................85
3.1 COMMUNAUTE BACTERIENNE INITIALE. ......................................................................................................... 85
3.2 MISE AU POINT DU PROTOCOLE DE PRODUCTION STANDARD............................................................................... 85
3.2.1 Etude de la stabilité de production de l'inoculum CB. .............................................................. 85
3.2.2 Essai d'amĠlioration des conditions de production de l'inoculum. ........................................... 87
3.3 PRODUCTION STANDARD DE L'INOCULUM BACTERIEN EN PRESENCE DE REFM. ........................................................ 88
4.2 ETAT INITIAL DES RAFLES : TENEUR EN MOLECULES ACTIVES................................................................................. 89
4.3.1 Cinétiques de sorption. ............................................................................................................ 89
4.4 TESTS DE MESURE DE L'ACTIVITE BIOLOGIQUE PAR RESPIROMETRIE. ...................................................................... 92
5 METHODES D'ANALYSES CHIMIQUES. ..................................................................................94
5.1 METHODES D'ANALYSE DES MOLECULES ACTIVES DES PRODUITS PHYTOSANITAIRES. ................................................. 94
5.1.1 Analyses des molécules en mélange. ....................................................................................... 94
5.1.2 Analyses des molécules dans les produits commerciaux. ......................................................... 95
5.1.3 Courbes de calibration . ........................................................................................................... 95
5.3 ANALYSES DE LA DCO ET DE L'AZOTE. ........................................................................................................... 97
6 METHODES D'ANALYSES BIOLOGIQUES. ...............................................................................98
6.1 DENOMBREMENT BACTERIEN. ..................................................................................................................... 98
6.1.1 Enumération à partir des cultures bactériennes. ..................................................................... 98
6.1.2 Enumération à partir des rafles de maïs. ................................................................................. 98
6.2 ISOLEMENT DES SOUCHES CULTIVABLES. ......................................................................................................... 98
6.3 IDENTIFICATION DES SOUCHES BACTERIENNES PAR SEQUENÇAGE. ......................................................................... 99
6.4 SUIVI DE LA DIVERSITE BACTERIENNE PAR TTGE. ............................................................................................. 99
6.4.1 Edžtraction de l'ADN bactĠrien. ................................................................................................. 99
6.4.2 Yuantification de l'ADN. ........................................................................................................ 100
6.4.3 Protocole d'amplification PCR du fragment V6-V8 de la rĠgion 16S de l'ADN ribosomique
bactérien. ............................................................................................................................................ 101
6.4.4 Electrophorèse TTGE des produits de PCR. ............................................................................. 102
6.5 TESTS ECOTOXICOLOGIQUES. ..................................................................................................................... 104
6.5.1 Inhibition de la mobilité des daphnies (norme NF ISO 6341, 2012). ....................................... 104
6.5.2 Test d'inhibition de la croissance algale, Pseudokirchneriella subcapitata (NF EN ISO 8692,
2012). .............................................................................................................................................. 104
7 ESSAIS DE CROISSANCE BACTERIENNE EN MICROPLAQUES BIOSCREEN. .............................. 105
7.1 METHODES COMMUNES A TOUS LES ESSAIS BIOSCREEN. .................................................................................. 105
7.1.1 Equipement. .......................................................................................................................... 105
7.1.2 Production des inocula pour les essais Bioscreen. .................................................................. 105
7.1.3 Milieux utilisés. ..................................................................................................................... 107
7.1.4 Préparation des solutions de molécules actives. .................................................................... 106
7.1.5 Préparation des modalités testées et dépôt en microplaques. ............................................... 107
7.1.6 Expression des résultats. ....................................................................................................... 107
7.2 VALIDATION DU SUIVI DE CROISSANCE BACTERIENNE PAR MESURE DE L'ABSORBANCE. ............................................ 107
7.3 BIOSCREEN 1 : EFFET DES PF, SEULS OU EN MELANGE, SUR LA CROISSANCE DE L'INOCULUM CB EN MILIEU LB ¼........... 109
7.4 BIOSCREEN 2 : CROISSANCE BACTERIENNE EN FONCTION DE LA COMPOSITION DU MILIEU ET DE LA CONCENTRATION DU
MELANGE REFM. ................................................................................................................................... 110
7.5 BIOSCREEN 3 : IMPACT DES PF ET/OU DES MOLECULES ACTIVES PURES, SEPARES OU EN MELANGE SUR LA CROISSANCE DE
L'INOCULUM CB EN MILIEU LB ¼. .............................................................................................................. 110
7.6 BIOSCREEN 4 : IMPACT DES PF ET/OU DES MOLECULES ACTIVES PURES, SEPARES OU EN MELANGE SUR LA CROISSANCE DE
L'INOCULUM CB EN MILIEU MINIMUM. ........................................................................................................ 111
7.7 BIOSCREEN 5 : IMPACT DE LA CONCENTRATION SUR LA CROISSANCE DE L'INOCULUM CB EN MILIEU MINIMUM. ............ 112
7.8 BIOSCREEN 6 : CROISSANCE DES BACTERIES ISOLEES COMPOSANT L'INOCULUM CB, EN MILIEU MINIMUM EN PRESENCE DES
PF SEULS OU EN MELANGE. ....................................................................................................................... 112
8 ESSAIS DE DEGRADATION. ................................................................................................. 113
8.1 DEFINITIONS DES PARAMETRES DE TRAITEMENT A PETITE ECHELLE. ..................................................................... 113
8.1.1 Essai de dissipation en traitement batch de 14 jours et Ġtude de l'influence du pH sur la
dissipation des molécules actives. ....................................................................................................... 113
8.1.2 Etude de complémentation du milieu en nutriments (N, P et K). ............................................ 114
8.2 ESSAIS DE DEGRADATION EN BIOREACTEURS. ................................................................................................ 116
8.2.1 Les réacteurs utilisés. ............................................................................................................. 116
8.2.2 Le milieu d'Ġtude. .................................................................................................................. 117
8.2.3 Efficacité du procédé batch de 14 jours : Essai 1. ................................................................... 117
8.2.4 Effet de la durée en procédé batch. ....................................................................................... 118
8.2.5 Effet de la réinoculation en procédé batch. ........................................................................... 118
8.2.6 Efficacité du procédé en batch séquentiel (SBR). ................................................................... 118
9 EPANDAGE DES EFFLUENTS SUR UN LIT PLANTE DE ROSEAUX. ............................................ 120
9.1 MATERIEL D'EXPERIMENTATION. ............................................................................................................... 120
9.2 MODALITES ETUDIEES.............................................................................................................................. 121
9.3 VOLUME D'APPORT DES EFFLUENTS. ........................................................................................................... 122
9.4 ANALYSES REALISEES. .............................................................................................................................. 122
10 ANALYSES STATISTIQUES DES RESULTATS. ......................................................................... 122
RESULTATS ET DISCUSSIONS
PARTIE A : Etude des composantes du milieu
1 CREATION D'UN MELANGE DE PRODUITS PHYTOSANITAIRES. ............................................ 125
1.1 LES BASES DE DONNEES SUR LES PRODUITS PHYTOSANITAIRES. .......................................................................... 125
1.2 SELECTION DES MOLECULES ACTIVES DU MELANGE D'ETUDE .............................................................................. 126
2 PRODUCTION ET CARACTERISATION DE L'INOCULUM......................................................... 130
2.1 CARACTERISATION DE LA CULTURE BACTERIENNE INITIALE : LE CONSORTIUM 106. ................................................. 130
2.2 PRODUCTION DE L'INOCULUM : SUIVI DE LA CROISSANCE BACTERIENNE EN BATCH AVEC PRESENCE DU MELANGE REFM. . 131
2.2.1 Suiǀi de la production de l'inoculum : étude de stabilité 1. .................................................... 131
2.2.2 Suiǀi de la stabilitĠ de production de l'inoculum : Etude de stabilité 2. .................................. 133
2.3 SUIVI DES COMMUNAUTES BACTERIENNES LORS DE LA PHASE DE PRODUCTION DE L'INOCULUM CB. ........................... 134
2.3.1 Impact du mélange RefM sur les communautés bactériennes. .............................................. 134
2.3.2 Identification des bactĠries cultiǀables de l'inoculum CB produit........................................... 136
2.4 ETUDE DU COMPORTEMENT DE L'INOCULUM CB EN PRESENCE DE PRODUITS PHYTOSANITAIRES : BIOSCREEN. .............. 139
2.4.1 Validation de la mesure de croissance bactĠrienne par lecture de l'absorbance. ................... 139
2.4.2 Impact des produits phytosanitaires sur la croissance de CB (Bioscreens 3 & 4). ................... 142
2.4.3 Impact des molĠcules actiǀes pures sur la croissance de l'inoculum CB (Bioscreens 3 Θ4). .... 147
2.4.4 Impact des adjuvants sur la croissance bactérienne. ............................................................. 149
2.4.5 Effet de la concentration (Bioscreens 5 & 2). ......................................................................... 151
(Bioscreen 6). ...................................................................................................................................... 153
2.5 SYNTHESE. ............................................................................................................................................ 156
3.1.1 Composition élémentaire. ..................................................................................................... 157
3.1.2 Etat initial : présence de molécules actives sur les rafles de maïs avant traitement. .............. 158
3.2 TESTS DE SORPTION. ............................................................................................................................... 159
3.2.1 Cinétique de sorption. ........................................................................................................... 159
3.2.2 Homogénéisation du mélange RefM : traitement aux ultrasons. ........................................... 161
3.2.3 Sorption des PF dans l'eau du rĠseau de distribution. ............................................................ 162
3.2.4 Impact de la concentration. ................................................................................................... 164
3.2.5 Modélisation de la sorption des PF par les rafles de maïs. ..................................................... 166
3.3.1 Dénombrement bactérien du milieu rafles de maïs et RefM. ................................................. 167
PARTIE B : Essais de dégradation au laboratoire1 ESSAI DE DISSIPATION EN PHASE LIQUIDE D'UN TRAITEMENT BATCH DE 14 JOURS. ........... 172
1.1 SUIVI DES CONCENTRATIONS DANS LA MODALITE TEMOIN (NON TRAITEE). ........................................................... 172
1.1.1 Evaluation des concentrations en molécules initialement introduites. .................................. 172
1.1.2 ModalitĠ d'interprĠtation des rĠsultats. ................................................................................ 174
1.2 EVOLUTION DES CONCENTRATIONS DANS LA MODALITE TRAITEE. ....................................................................... 175
1.3 EVOLUTION DU PH DES MILIEUX TRAITES OU NON. ......................................................................................... 176
2 INFLUENCE DE L'EVOLUTION DU PH SUR LA DISSIPATION DES MOLECULES ACTIVES DES PF.177
2.1 EVOLUTION DES VALEURS DE PH DANS LE MILIEU DE TRAITEMENT. ..................................................................... 178
2.3 EFFET DU PH SUR LA DISSIPATION DES MOLECULES ACTIVES. ............................................................................. 179
2.4 IMPACT DE LA REGULATION DU PH DURANT LE TRAITEMENT SUR LA CONCENTRATION TOTALE DES MOLECULES ACTIVES. . 181
2.5 SYNTHESE. ............................................................................................................................................ 182
3 EFFET DE LA COMPLEMENTATION N, P, K SUR LA DEGRADATION........................................ 183
3.2 COMPARAISON DES CONCENTRATIONS RESIDUELLES. ...................................................................................... 184
3.3 COMPARAISONS DES TAUX DE DEGRADATION PAR MOLECULE. .......................................................................... 185
....................................................................................................................................................... 186
4 CONCLUSION..................................................................................................................... 188
PARTIE C : Essais de dégradation en bioréacteur.1 EFFICACITE DU PROCEDE BATCH 14 JOURS : ESSAI 1. .......................................................... 190
1.2 SUIVI DES CONCENTRATIONS EN MOLECULES ACTIVES. ..................................................................................... 191
1.3 GAINS DE DEGRADATION. ......................................................................................................................... 194
2 OPTIMISATION DE LA DEGRADATION EN BATCH. ............................................................... 195
2.1 AUGMENTATION DU TEMPS DE SEJOUR : ESSAI 2. .......................................................................................... 195
2.1.1 Suivi du pH, de la pO2 et de la matière sèche. ........................................................................ 195
2.1.2 Concentrations mesurées en fin de traitement à 28 jours. ..................................................... 197
2.1.3 Evolution des concentrations en phase liquide en fonction du temps. ................................... 198
2.1.4 Comparaison des gains de dégradation en fonction du temps. .............................................. 199
2.2 EFFET DE LA REINOCULATION EN COURS DE CYCLE : ESSAI 3. ............................................................................. 201
2.2.1 Suivi du pH, de la pO2 et de la matière sèche. ........................................................................ 202
2.2.2 Comparaisons des concentrations finales en matières actives. .............................................. 202
2.2.3 Comparaison des gains de dégradation. ................................................................................ 205
2.3 EFFICACITE DE DEGRADATION TOTALE DU PROCEDE BATCH. .............................................................................. 205
3 FAISABILITE DE TRAITEMENT EN SYSTEME BATCH SEMI-CONTINU (SBR) : ESSAI 4. .............. 208
3.1 EVOLUTION DU PH, DE LA PO2 ET DE LA MATIERE SECHE. ................................................................................. 209
3.2 EVOLUTION DE LA DCO ET DES TENEURS EN AZOTE EN SOLUTION. ...................................................................... 210
3.3 CONCENTRATIONS ET GAINS DE DEGRADATION EN FIN DE 2
E CYCLE DU TRAITEMENT SBR. ........................................ 2133.4 COMPARAISON DES GAINS DE DEGRADATION OBTENUS EN 2E CYCLE SBR COMPARATIVEMENT AU 1ER CYCLE SBR 14. .. 214
3.5 SUIVI DES POPULATIONS BACTERIENNES. ...................................................................................................... 216
PARTIE D : Ecotoxicité des effluents
1 IMPACT DES EFFLUENTS SUR LES BIOINDICATEURS............................................................. 219
1.1 RESULTATS DES TESTS ALGUES ET LEMNA MINOR. .......................................................................................... 219
1.2 RESULTATS DU TEST DAPHNIES. ................................................................................................................. 222
1.3 EVALUATION DU RISQUE ENVIRONNEMENTAL................................................................................................ 223
2 FAISABILITE D'EPANDAGE DES EFFLUENTS TRAITES SUR UN LIT PLANTE DE ROSEAUX. ........ 224
2.1 EVALUATION DE LA CROISSANCE DES ROSEAUX. ............................................................................................. 225
2.2 EVOLUTION DES CONCENTRATIONS EN MOLECULES ACTIVES DES PF DANS L'EAU DE POROSITE DU SOL. ........................ 228
2.2.1 Tendance générale. ............................................................................................................... 228
2.2.2 Tendance par molécule .......................................................................................................... 232
2.3 SUIVI DES POPULATIONS BACTERIENNE DU SOL .............................................................................................. 235
2.4 CONCLUSION ......................................................................................................................................... 237
CONCLUSION ET PERSPECTIVES.................................................................................................. 240
ANNEXES .................................................................................................................................. 250
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES ............................................................................................... 261
VALORISATION SCIENTIFIQUE .................................................................................................... 291
8Index des abréviations
2,4-D : acide 2,4-dichlorophénoxyacétique
3,4-DCA : 3,4-dichloroaniline
4-IA : 4-isoproylaniline
ACP : Analyse en Composantes Principales
ADN : Acide Désoxyribonucléique
AERM -Meuse
AMM : Autorisation de Mise en Marché
AMPA : acide aminométhylphosphonique
ANSES : Agence Nationale de SEcurité Sanitaire de travail ARLASC : Agence de Réglementation de la Lutte Antiparasitaire de Santé du Canada ASE : Accelerated Solvent Extraction (Extraction Accélérée par Solvant) BNVD : Banque Nationale des Ventes pour les Distributeurs CAS : Chemical Abstract Service (registre des substances chimiques)CB : Inoculum bactérien CB
CEC : c
CEx : concentration en produit induisant -indicateur. CE50 : concentration en produit testé qui induit un effet inhibiteur sur 50 % de la population -indicateur.CE : Communauté Européenne
CEE : Communauté Economique Européenne
CGDD : Commissariat Général au Développement Durable COB : laboratoire de Chimie Organique et Bioorganique de Mulhouse (UHA)C/P : Candecomp/Parafac
CRT : Centre de Ressources Technologiques
DBO : Demande Biologique en Oxygène
DCEDCO : Demande Chimique en Oxygène
DCGA : 2,5-dichloro-3,6-dihydroxybenzoic acid (acide 2,5-dichloro-3,6-dihydroxy-benzoique) DCM : Dissolved colloidal Matter (Matière colloïdale Dissoute) DCSA : 3,6-dichloro-2-hydroxybenzoic acid (acide 3,6-dichloro-2-hydroxybenzoique)DDIPU : didesméthylisoproturon
DIS : Déchets Industriels Spéciaux
DT50 : Temps de demi-vie
E : Engrais
EBDC : ethylene bisdithiocarbamate (éthylène-bis-dithiocarbamate) EBIS : ethylene bisisothiocyanate sulfide (éthylène-bis-isothiocyanate sulfite) ECB : European Chemical Bureau (bureau européen des produits chimiques)EDA : ethylenediamine (éthylène diamine)
EDTA : ethylene diamine tetraacetic acid (acide éthylène-diamine-tétraacétique) EFSA : European Food Safety Agency (Autorité Européenne de Sécurité Alimentaire)Eh : p-réduction
ER : extrait aqueux de rafles de maïs
ERE : Etude de Risque Environnemental
ESA : ethane sulfonic acid (acide éthanesulfonique) ETD : ethylenethiuram disulfide (éthylènethiurame disulfite) ETU : ethylenethiourea (éthylène thiourée)EU : ethyleneurea (éthylene urée)
HAP : Hydrocarbure Aromatique Polycyclique
HPLC-MSQ : High Performance Liquid Chromatography- Mass Spectrometry Quantification (Chromatographie Liquide Haute Performance et Spéctrométrie de Masse) 9 ICPE : Installation Classée pour la Protection deIFT : Indice de Fréquence de Traitement
INERIS
INRA : Institut National de la Recherche AgronomiqueIPU : isoproturon
K : Potassium
Kd : coefficient de partage eau-sol
KOC : coefficient de partage entre le ca
LB : Luria Bertani
LD : limite de détection
LDAR :
leBiBIQBPP : aux archées et fondé bibiserv/lebibi/lebibi.cgi).LQ : Limite de quantification
LOEC : Low Observed Effect Concentration (Concentration la plus faible ayant un effet)Log Kow : coefficient de partage octanol/eau
LVBE : Laboratoire Vigne Biotechnologies et EnvironnementMA : Molécules Actives
MCPA : 4-chloro-2-methylphenoxyacetic acid (acide 4-chloro-2-méthylphénoxyacétique)MCPP : 4-chloro-2-methylphenoxypropionic acid
(acide 4-chloro-2-méthylphénoxypropionique)MDIPU : monodesméthylisoproturon
MF : Matière Fraîche
MM : Milieu Minimum
MR : Mass Ruler (marqueurs de taille)
MS : Matière sèche
N: azote
NC : non complémenté
NCBI : National Center for Biotechnology Information (Centre américain pour les informations biotechnologiques)quotesdbs_dbs33.pdfusesText_39
[PDF] Éthique et sport scolaire
[PDF] Point de vue sur la formation des ingénieurs en France
[PDF] Mission de programmation pour la réhabilitation du Moulin de Lèves
[PDF] Licence Professionnelle - Assurance, banque, finances
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