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Faculté de médecine vétérinaire

Département des sciences des denrées alimentaires - Microbiologie Laboratoire national de référence en microbiologie des denrées alimentaires

Professeur G. Daube

Sart Tilman, Bât.B43b, B-4000 Liège 1/18

Tél. 04 366 42 26, Fax 04 366 40 44 , e-mail Georges.Daube@ulg.ac.be

5 octobre 2006

PROTOCOLE DE MISE EN OEUVRE DES CHALLENGE TESTS

RELATIFS A LISTERIA MONOCYTOGENES

1. INTRODUCTION......................................................................................................................................2

2. BASES REGLEMENTAIRES.................................................................................................................3

3. CLASSIFICATION DES DENREES ALIMENTAIRES.....................................................................3

4. DÉFINITION D'UN CHALLENGE TEST............................................................................................5

5. PROTOCOLE D'UN CHALLENGE TEST...........................................................................................6

5.1. DESCRIPTION DU PRODUIT ET DU PROCEDE DE FABRICATION...............................................................6

5.1.1. Procédé de fabrication..................................................................................................................6

5.1.2. Denrée alimentaire .......................................................................................................................7

5.2. INOCULATION DE L'ALIMENT................................................................................................................7

5.2.1. Choix des souches.........................................................................................................................7

5.2.2. Préparation de l'inoculum............................................................................................................7

5.2.3. Inoculation de l'aliment................................................................................................................8

5.3. TEST DE CROISSANCE............................................................................................................................9

5.3.1. Conditions de conservation de la denrée alimentaire inoculée...................................................9

5.3.2.

Nombre d'analyses par lot de produit..........................................................................................9

5.3.3. Nombre de lots..............................................................................................................................9

5.4. ESSAIS MICROBIOLOGIQUES................................................................................................................10

5.4.1. Méthode d'analyse......................................................................................................................10

5.4.2. Présentation des résultats...........................................................................................................10

6. MODALITÉS D'INTERPRÉTATION D'UN CHALLENGE TEST ...............................................11

6.1. PROTOCOLE LIMITE.............................................................................................................................11

6.2. P

ROTOCOLE COMPLET.........................................................................................................................12

7. ANNEXES.................................................................................................................................................16

Laboratoire national de référence en microbiologie des denrées alimentaires

Sart Tilman, Bât.B43b, B-4000 Liège

Tél. 04 366 42 26, Fax 04 366 40 44 , e-mail Georges.Daube@ulg.ac.be 2/18

1. Introduction

Cette procédure a été rédigée par le Laboratoire National de Référence en microbiologie des

denrées alimentaires de l'Université de Liège à la demande de l'AFSCA. Il est basé sur un avis de

l'Agence Française de Sécurité Sanitaire des Aliments nommé " Avis sur la révision de l'avis 2000-SA-

0094 sur la classification des aliments au regard du risque représenté par Listeria monocytogenes et les

protocoles de tests de croissance (Saisine n° 2003-SA-0362) ». Il tient compte de l'avis du Comité

Scientifique de l'AFSCA (dossier Sci Com 2005/49). Ce document constitue un guide pour la mise en

oeuvre d'un certain nombre de dispositions relatives à Listeria monocytogenes tirées du Règlement (CE)

n°2073/2005 concernant les critères microbiologiques applicables aux denrées alimentaires. Il sera

utilisé comme guide par les fabricants pour effectuer les études sous-mentionnées, et par les

inspecteurs/contrôleurs de l'AFSCA pour évaluer ces études. Il y a lieu de souligner que les directives

mentionnées dans le document sont indissociables du système d'autocontrôle (HACCP) qui est

d'application dans une entreprise du secteur alimentaire. Plus précisément ce document a pour but

d'identifier les points importants permettant d'évaluer un protocole de test de croissance ou challenge

test pour L. monocytogenes dans les produits prêts à être consommés (ready-to-eat). Listeria monocytogenes est un microorganisme psychrotrophe (adapté aux températures de

réfrigération), pouvant se multiplier à une température minimale de -3°C, maximale de 45°C, et de façon

optimale à 37°C. L'activité de l'eau minimale (a w ) à laquelle L. monocytogenes peut se développer est de

0,92, ce qui correspond notamment à 11,9% de NaCl. Ce microorganisme peut se multiplier dans une

gamme de pH allant de 4,4 à 9,4, son optimum étant de 7,0. L. monocytogenes peut cependant survivre

en dehors de ces limites. Laboratoire national de référence en microbiologie des denrées alimentaires

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2. Bases réglementaires

Ces challenge tests s'inscrivent dans le cadre du Règlement (CE) n° 2073/2005 concernant les

critères microbiologiques applicables aux denrées alimentaires. Celui-ci fixe les critères de sécurité

alimentaire suivants pour Listeria monocytogenes dans les denrées alimentaires prêtes à être

consommées, non destinées aux nourrissons ou à certaines fins médicales : A / Si la denrée permet la croissance de L. monocytogenes :

1. une limite de 100 unités formant colonies (ufc/g) pendant toute la durée de vie de

l'aliment, ou

2. l'absence dans 25 g avant que l'aliment ne quitte le contrôle immédiat du fabricant.

Le premier critère peut être appliqué si le fabricant peut démontrer à la satisfaction de l'autorité

compétente que l'aliment ne dépassera pas cette limite pendant toute sa durée de vie. Si le fabricant

ne peut pas le démontrer à la satisfaction de l'autorité compétente, c'est le deuxième critère qui est

d'application. B/ Si la denrée ne permet pas la croissance de L. monocytogenes : une limite de 100 ufc/g pendant la durée de vie de l'aliment doit être respectée.

3. Classification des denrées alimentaires

Selon l'article 3, point 2 du Règlement (CE) n°2073/2005, les exploitants du secteur alimentaire

sont tenus de réaliser des études pour vérifier si les critères mentionnés précédemment sont respectés

pendant toute la durée de vie des aliments. Ceci vaut en particulier pour les denrées prêtes à être

consommées permettant la croissance de L. monocytogenes.

Dans le cadre du challenge test, les aliments peuvent être regroupés en 5 catégories (tableau I).

Des exemples de denrées alimentaires appartenant aux différentes catégories sont donnés en annexe 1.

En pratique, on parvient généralement à empêcher le développement de L. monocytogenes par une

combinaison de facteurs (par ex. abaissement du pH, de l'activité de l'eau et de la température,

éventuellement combiné à l'utilisation d'agents conservateurs comme des acides organiques, ou d'un

emballage sous atmosphère modifiée). Dans le document " croissance et survie de Listeria monocytogenes: mesures de prévention dans la chaîne alimentaire 1 , un certain nombre

d'exemples de combinaisons empêchant le développement de L. monocytogenes sont donnés (annexe 2).

1 F. Devlieghere, M. Uyttendaele, Laboratorium voor Levensmiddelenmicrobiologie en -conservering,

Universiteit Gent

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Tél. 04 366 42 26, Fax 04 366 40 44 , e-mail Georges.Daube@ulg.ac.be 4/18 Tableau I : catégories d'aliments à considérer dans le cadre des challenge tests. catégorie 0 Aliments exemptés de challenge test par le règlement (CE) n° 2073/2005. " Des essais périodiques fondés sur ce critère ne sont pas utiles, en temps normal pour les denrées alimentaires prêtes à être consommées suivantes : - denrées alimentaires ayant fait l'objet d'un traitement thermique ou d'une autre transformation efficace pour éliminer L. monocytogenes, lorsque la recontamination n'est pas possible après ce traitement (par exemple les produits traités thermiquement dans leur emballage final), - fruits et légumes frais, non découpés et non transformés, à l'exception des graines germées, - pain, biscuits et produits similaires, - eaux, boissons non alcoolisées, bière, cidre, vin, boissons spiritueuses en bouteille ou conditionnés et produits similaires, - sucre, miel, et confiserie, y compris les produits à base de cacao et de chocolat, - mollusques bivalves vivants. » catégorie 1 Aliments qui vont subir un procédé assurant une destruction de L. monocytogenes suffisante au stade de leur consommation.

catégorie 2 Denrées alimentaires prêtes à être consommées destinées aux nourrissons et

denrées alimentaires prêtes à être consommées destinées à des fins médicales.

catégorie 3 Cette catégorie comporte :

3.1 Les aliments dont les propriétés physico-chimiques permettent d'exclure la

multiplication de L. monocytogenes, c'est-à-dire : - pH 4,4 (ou pH 4,5 si l'acidification est obtenue avec de l'acide lactique ou de l'acide acétique) ; - a w

0,92 ;

- pH 5,0 et a w

0,94 ;

- produit congelé ou surgelé.

3.2 Les aliments qui présentent une durée de conservation inférieure à 5 jours

3.3 Les aliments dont l'absence de croissance est suggérée par des données

scientifiques confortées par un challenge test limité de vérification. catégorie 4 Aliments prêts à être consommés et dans lesquels L. monocytogenes peut se multiplier. Laboratoire national de référence en microbiologie des denrées alimentaires

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4. Définition d'un challenge test

Un test de croissance ou challenge test correspond à une expérience destinée à évaluer

l'accroissement de la population d'un microorganisme (généralement identifié comme un danger) dans

une denrée alimentaire inoculée artificiellement avec une culture connue de ce microorganisme, et

analysée dans les conditions raisonnablement prévisibles de son utilisation. Il s'agit de tests permettant

de définir un potentiel de croissance, soit à une température constante, soit au cours d'un profil temps /

température (simulant par exemple la chaîne du froid avec rupture). Le potentiel de croissance est la

différence entre le logarithme décimal de la concentration après croissance et le logarithme décimal de

la concentration initiale (la durée pouvant inclure la phase de latence et/ou la phase exponentielle et/ou

la phase stationnaire). Dans la définition du potentiel de croissance, il faut tenir compte de l'incertitude

de mesure. L'annexe 3 de cet avis donne de plus amples informations sur l'incertitude de mesure des

déterminations microbiologiques quantitatives (dénombrements). Normalement, cette incertitude de

mesure doit être déterminée par chaque laboratoire accrédité effectuant les dénombrements. Sur le

terrain, on présume souvent que l'incertitude de mesure d'un dénombrement microbiologique est de ±

0,5 unités log.

Les denrées alimentaires de catégorie 0 et 1 ne doivent pas subir de challenge test et ne sont pas

soumis à des critères microbiologiques légaux concernant Listeria monocytogenes. Les produits de

catégorie 2 doivent constamment respecter le critère " absence dans 25 grammes ». Le but du

challenge test pour les denrées alimentaires de catégorie 3 est de confirmer les données scientifiques et

les modèles prévisionnels selon lesquels la multiplication de L. monocytogenes n'est pas possible. Le

challenge test appliqué est dit " limité ». Le challenge test concernant les denrées alimentaires de

catégorie 4 a pour but l'estimation du potentiel de multiplication de L. monocytogenes. Un organigramme de décision se trouve en annexe 4.

Si on estime qu'un aliment fait partie de la catégorie 3 sur base de données scientifiques publiées

(éventuellement étayées à l'aide des modèles prévisionnels), et si cet aliment ne satisfait pas aux

caractéristiques énumérées dans ce document (ou dans le Règlement (CE) N°2073/2005 ou dans un

autre texte réglementaire) en matière de pH, d'activité de l'eau, de congélation/surgélation ou de durée

de conservation, il est impératif de tester si cet aliment ne permet pas, en effet, le développement de L.

monocytogenes. Ce test de vérification consiste en un unique challenge test limité dans lequel l'aliment

est inoculé avec L. monocytogenes et où la concentration de L. monocytogenes est déterminée le jour 0

et en fin de conservation. C'est seulement si aucun développement n'est constaté (compte tenu de

l'incertitude de mesure de la détermination quantitative microbiologique) que la catégorie 3 est

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Pour les aliments de la catégorie 4, des tests de croissance doivent être réalisés pour démontrer

que le produit ne dépassera pas la limite de 100 ufc/g pendant toute sa durée de vie microbiologique. Le

principe général veut que les pathogènes doivent autant que possible être absents de la chaîne

alimentaire. Le Règlement (CE) N°2073/2005 (Annexe I, Chapitre 1, catégorie 1.2, note 5) indique que

si L. monocytogenes est néanmoins présent par accident, le niveau de contamination toléré à la sortie

de production doit être tel que la limite de 100 ufc/g citée par le Règlement (CE) N°2073/2005 soit

respectée à la date limite de consommation. La valeur de tolérance à la sortie de production dépend du

potentiel de L. monocytogenes à se multiplier dans l'aliment en question dans les conditions de

conservation et pendant le délai de conservation prescrits. Cette croissance sera quantifiée au moyen de

challenge tests (où le pathogène est artificiellement inoculé dans/sur l'aliment), dont les résultats seront

étayés par la littérature scientifique ou des modèles de prédiction. Si le potentiel de croissance de L.

monocytogenes ne peut pas être étayé par le fabricant, il faut utiliser le critère " absence dans 25 g ».

Pour ces aliments de la catégorie 4, un challenge test à deux points, en l'occurrence le jour 0 (jour de

sortie de production) et à la date limite de consommation (DLC) sera réalisé, afin d'estimer le potentiel

de croissance de L. monocytogenes dans l'aliment dans les conditions de conservation prescrites. Ce

potentiel de croissance permettra de déduire la valeur de tolérance pour L. monocytogenes à la sortie de

production. Cette valeur de tolérance sera utilisée, d'une part par le fabricant dans le cadre des

autocontrôles du système HACCP, et d'autre part par l'autorité compétente pour contrôler le respect du

critère du Règlement (CE) N°2073/2005 (Annexe I, Chapitre 1, catégorie 1.2). La réalisation d'un

challenge test à plusieurs points de mesure peut fournir des informations additionnelles intéressantes

pour le fabricant, mais n'est pas strictement nécessaire pour l'établissement de la valeur de tolérance,

puisque seuls les points de mesure le jour 0 et en fin de conservation (DLC) seront pris en compte.

L'obtention d'une véritable courbe de croissance nécessite, quant à elle, un minimum de 10 points de

mesure afin de déterminer de manière fiable la phase de latence et le taux de croissance 2

5. Protocole d'un challenge test

5.1. Description du produit et du procédé de fabrication

5.1.1. PROCEDE DE FABRICATION

Un descriptif succinct du procédé de fabrication doit être disponible. Cette description peut être

déduite du système HACCP disponible dans l'entreprise. Elle doit mettre en exergue les étapes critiques

du procédé permettant la contamination de l'aliment par L. monocytogenes de même que celles permettant sa multiplication ou sa survie. 2 Walker SJ and Jones JE (1993). Protocols for data generation for predictive modelling. J. Industrial

Microbiology, 12, 273-276

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5.1.2. DENREE ALIMENTAIRE

Les caractéristiques du produit doivent être décrites : caractéristiques physico-chimiques (pH, aw,

contenu en sel, concentration en conservateurs), structure, type de conservation (congelé, surgelé,

frais), conditionnement (sous vide, sous atmosphère modifiée...). Il en va de même pour tout autre

facteur pouvant influencer le comportement de L. monocytogenes et dont il faudra tenir compte dans le

test. Il faut également expliquer le profil temps / température prévu pour l'aliment, c'est-à-dire les

combinaisons temps / température (que l'on s'attend à voir respectées) pendant le stockage interne dans

l'établissement, pendant le transport, pendant l'éventuel stockage intermédiaire dans le centre de

distribution, pendant l'étalage dans les comptoirs frigorifiques du commerce de détail et pendant la

conservation chez le consommateur. La durée maximale de conservation doit également être clairement

indiquée. La nature des flores annexes habituellement rencontrées et les habitudes raisonnablement

prévisibles et le niveau de consommation doivent être mentionnés. Il faut également rassembler les

données de surveillance ou de contrôle du produit concerné (autocontrôles de l'établissement ou de la

filière, données bibliographiques, plans de surveillance).

5.2. Inoculation de l'aliment

5.2.1. CHOIX DES SOUCHES

Au moins deux souches isolées de préférence de l'aliment sont choisies et étudiées. Il faut utiliser

de préférence des isolats bien identifiés et dont les caractéristiques de croissance et la morphologie ont

été étudiées. Il n'est pas toujours possible d'isoler et d'identifier correctement une souche de l'aliment en

question. On peut donc utiliser des souches isolées d'une matrice de même nature. Il n'est pas

nécessaire d'étudier séparément les deux souches sélectionnées. Après culture, les différentes souches

peuvent être mélangées préalablement à leur inoculation dans la denrée alimentaire en question. Il n'est,

en effet, pas nécessaire de vérifier pour les deux souches séparément si elles peuvent se développer

dans l'aliment en question.

5.2.2. P

REPARATION DE L'INOCULUM

La température de culture sera choisie de sorte qu'une culture standardisée de cellules en phase

stationnaire soit obtenue, ce qui permet d'obtenir facilement la concentration initiale visée (ufc/g

d'aliment). Cela peut être obtenu, par exemple, après une culture à une température suffisante pour

permettre la multiplication de L. monocytogenes (par exemple 14°C) pendant un temps suffisant pour

atteindre la phase stationnaire, suivie par une conservation pendant environ 12 heures à la température

de consigne (en général 4°C pour les denrées réfrigérées). Des études préliminaires sont donc

nécessaires pour assurer une planification et réalisation correctes du challenge test. Laboratoire national de référence en microbiologie des denrées alimentaires

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Le nombre initial de cellules dans l'aliment doit être assez élevé pour limiter les effets de la

variabilité de la croissance dus à de faibles niveaux d'inoculum. Les cellules individuelles présentent, en

effet, une grande variabilité en ce qui concerne la longueur de la phase de latence 3 . On doit inoculer au

minimum de 100 à 1000 cellules par portion d'aliment utilisée dans le challenge test. L'inoculation de

nombres trop élevés de L. monocytogenes n'est pas non plus recommandée parce qu'elle est peu

réaliste au regard des niveaux de contamination rencontrés dans les échantillons naturellement

contaminés, et parce que la flore compétitive est alors entièrement masquée et qu'on obtient souvent

une surestimation du potentiel de croissance. Il est recommandé de choisir un niveau d'inoculum qui soit

réaliste tout en permettant d'obtenir des nombres comptables (i.e. 10 ufc/g au minimum). Pour obtenir

une concentration initiale inférieure à 100 ufc/g, il faut choisir soigneusement la taille de la portion

d'aliment qui sera testée. En outre, on doit déterminer aussi bien avant qu'immédiatement après

l'inoculation la concentration de L. monocytogenes de l'inoculum et de l'aliment, étant donné qu'il peut

toujours y avoir des cellules de L. monocytogenes présentes dans l'aliment avant l'inoculation.

5.2.3. INOCULATION DE L'ALIMENT

L'inoculation doit simuler le mieux possible les conditions naturelles de contamination. Différentes

modalités d'inoculations sont explicitées dans le tableau II. L'inoculation est réalisée en modifiant le

moins possible la structure, la composition, les propriétés physico-chimiques, la flore microbienne

naturellement présente et le conditionnement de l'aliment. Elle doit en outre assurer une répartition la

plus homogène possible dans les zones prélevées pour analyse. Le volume de l'inoculum doit être

suffisant pour permettre cette bonne répartition mais ne doit pas être trop élevée pour ne pas modifier

les propriétés de substrat de croissance de la denrée alimentaire.

Tableau II. Modalités d'inoculation

Lieu(x) d'inoculation Contamination naturelle simulée Exemple En profondeur et en surface Aliments préparés par mélange de plusieurs matières premières dont l'une peut être contaminée Salade composée, produit haché, produit divisé

En surface Post-contamination après un

traitement listéricide Pâté, jambon 3

François K (2005). Effect of environmental and precultural conditions on the lag phase of Listeria

monocytogenes at the individual cell level. PhD dissertation, Ghent University, Laboratory of Food

Microbiology and Preservation

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5.3. Test de croissance

5.3.1. CONDITIONS DE CONSERVATION DE LA DENREE ALIMENTAIRE INOCULEE

Les conditions de conservation appliquées durant le test de croissance doivent respecter les

obligations réglementaires et les conditions auxquelles est soumises le produit commercialisé jusqu'à sa

consommation finale.

Le test de croissance est soit réalisé à une température fixe, soit à des températures variables.

Dans le premier cas, une même température, qui sera justifiée, sera utilisée pendant toute la durée de

conservation. Elle doit correspondre à la température la plus probable de conservation dans le cas d'une

maîtrise totale de la chaîne du froid jusqu'à la consommation.

Dans le deuxième cas, un profil temps / température doit être défini. La durée et la température de

chaque étape de la vie du produit (en prenant en compte les différentes ruptures possibles de la chaîne

du froid) devront être justifiées et choisies en envisageant les conditions réalistes les plus favorables à la

croissance bactérienne. Ce profil temps / température doit être standardisé. En l'absence de norme

internationale à suivre, le profil sera choisi de manière à ce que la denrée alimentaire soit incubée durant

1/3 de la durée du challenge test à une température T

1 , et durant 2/3 de la durée à une température T 2 T 1

représentant la température chez le fabricant (stockage interne) ou la température légale de

conservation, et T 2 la température moyenne d'un réfrigérateur ménager en Belgique (cette dernière peut,

par ex., être estimée sur base des données tirées de l'enquête sur les habitudes alimentaires). Le

respect des températures de conservation doit être garantie par le système d'assurance qualité du

laboratoire.

5.3.2. N

OMBRE D'ANALYSES PAR LOT DE PRODUIT

L'objectif est d'évaluer l'accroissement de la population de L. monocytogenes au cours de

la conservation. Afin de tenir compte de l'éventuelle hétérogénéité au sein d'un lot, il faut tester

au moins deux unités par lot, c'est-à-dire qu'à chaque lot examiné deux tests de croissances

doivent être réalisés en parallèle, avec analyse au jour 0 et à la DLC.

5.3.3. NOMBRE DE LOTS

Le nombre de lots testés sera d'autant plus grand que les lots de fabrication présentent une

hétérogénéité entre eux, avec un minimum de deux lots pour les challenge tests limités pour s'assurer

qu'un aliment appartient bien à la catégorie 3, ou avec un minimum de trois lots étudiés pour évaluer les

potentialités de croissance de L. monocytogenes dans une denrées de catégorie 4.

Le nombre de challenge tests doit être augmenté en fonction du degré d'hétérogénéité au sein

d'un lot et entre les lots, de la mesure dans laquelle le lot représente ou non un "worst case scenario" de

l'aliment, de la marge de sécurité relative à la valeur de tolérance fixée le jour 0, du degré de mise en

place et de vérification du plan HACCP au sein de l'entreprise (voir exemples au point 6). Laboratoire national de référence en microbiologie des denrées alimentaires

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5.4. Essais microbiologiques

5.4.1. METHODE D'ANALYSE

La méthode d'analyse (dénombrement de Listeria monocytogenes) doit faire partie de la liste des

méthodes reconnues par l'AFSCA. Le laboratoire réalisant les dénombrements de L. monocytogenes

doit être agréé par l'AFSCA pour ce paramètre. Les dénombrements de L. monocytogenes étant de

l'ordre de 10-100 ufc/g, ils doivent être réalisés conformément au Règlement (CE) N°2073/2005 (Annexe

I, Chapitre 1, note 6), en étalant 1 ml sur 3 boîtes de Petri de 90 mm de diamètre ou sur 1 boîte de 140

mm de diamètre.

5.4.2. P

RESENTATION DES RESULTATS

Pour chaque lot, toutes les mesures obtenues à chaque point d'analyse doivent être fournies (éventuellement sous une forme graphique) ainsi que les valeurs moyennes pour chaque point

d'analyse. Toutes les représentations graphiques et tous les calculs doivent être réalisés sur les

données en logarithme base 10 du nombre d'ufc/g. Pour chaque lot, le potentiel de croissance est

constitué de la différence entre le résultat le plus élevé en logarithme base 10 du dénombrement réalisé

à la DLC et celui le plus bas du dénombrement réalisé au jour 0. Le nombre de jours de conservation entre chaque point d'analyse et les potentiels de croissance correspondants doivent être clairement indiqués. Pour les tests au cours desquels plusieurs

températures sont utilisées, le scénario thermique du challenge test doit être fourni sous la forme de

graphe et/ou de tableau. L'intégralité des résultats obtenus doit être accessible. L'interprétation des

résultats doit être confiée à un microbiologiste qualifié. Laboratoire national de référence en microbiologie des denrées alimentaires

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6. Modalités d'interprétation d'un challenge test

6.1. Protocole limité

Lors de la réalisation d'un challenge test limité dans le cas d'un aliment de catégorie 3.3, on peut

obtenir les points de mesure suivants le jour 0 et en fin de conservation (DLC) : Cas 1 lot jour concentration (ufc/g) concentration (log 10 ufc/g) potentiel de croissance DLC max - jour 0 min (log 10 ufc/g)

40 1,60

0 60 1,78

100 2,00

1

DLC 20 1,30 0,40

50 1,70

0 30 1,48

30 1,48

2

DLC 40 1,60 0,12

Cas 2 lot jour concentration (ufc/g) concentration (log 10 ufc/g) potentiel de croissance DLC max - jour 0 min (log 10 ufc/g)

50 1,70

0 70 1,85

30 1,48

1

DLC 120 2,08 0,38

40 1,60

0 50 1,70

100 2,00

2

DLC 60 1,78 0,40

Dans ces 2 exemples, la différence entre les dénombrements en fin de conservation par rapport

au jour 0 n'est jamais supérieure à 0,5 unité log. Les changements dans les valeurs des dénombrements

peuvent être imputables à l'incertitude de mesure de la détermination microbiologique, et non à la

croissance/disparition du pathogène. Ces résultats confirment l'appartenance de l'aliment à la catégorie

3 et signifient qu'on peut utiliser le critère " < 100 ufc/g » dès la sortie de production et pendant toute la

durée de conservation. Laboratoire national de référence en microbiologie des denrées alimentaires

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Tél. 04 366 42 26, Fax 04 366 40 44 , e-mail Georges.Daube@ulg.ac.be 12/18 Cas 3 lot jour concentration (ufc/g) concentration (log 10 ufc/g) potentiel de croissance DLC max - jour 0 min (log 10 ufc/g)

50 1,70

0 30 1,48

80 1,90

1

DLC 100 2,00 0,52

60 1,78

0 70 1,85

80 1,90

2

DLC 120 2,08 0,30

Dans ce cas, la différence pour le premier lot testé dépasse 0,5 unité log. Une croissance de L.

mononcytogenes est donc possible. De ce fait, l'aliment en cause doit être classé dans la catégorie 4, ce

qui implique la réalisation d'un challenge test complet (cf ci-dessous).

6.2. Protocole complet

On trouvera ci-dessous une série d'exemples où 3 lots d'un aliment font l'objet d'un challenge test

réalisé chaque fois en double (= sur 2 unités pour chaque lot). Ce qui signifie qu'au total, on obtient au

minimum 6 valeurs de points de mesure le jour 0 et en fin de conservation. Dans le cas où un challenge

test limité a déjà été réalisé, les valeurs obtenues peuvent être conservée pour le protocole complet.

Cas 1 lot jour concentration (ufc/g) concentration (log 10 ufc/g) potentiel de croissance DLC max - jour 0 min (log 10 ufc/g)

30 1,48

0 40 1,60

570 2,76

1

DLC 280 2,45 1,28

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