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Les CULTURES in vitro VEGETALES Les CULTURES in vitro VEGETALES

biotechnologies.education page 2. DES PROPRIETES : A savoir ! Les techniques de culture in vitro végétales utilisent la propriété de totipotence des cellules.



Cours Biotechnologie végétale 2016-2017 Cours Biotechnologie végétale 2016-2017

cellulaire imposée par la culture in vitro. Page 17. Totipotence: aptitude de la cellule Comparaison culture in vitro / culture in situ. Culture in vitro ...



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30 déc. 2022 utilisé largement en culture in vitro. 1964 Guha et Maheshwari ... Capacité des cellules végétales cultivées in vitro de générer des embryons.



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cellules végétales cultivées in vitro. Les connaissances dans ce domaine sont en qu'en France



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COURS DE

BIOTECHNOLOGIE

VEGETALECULTURE IN VITRO

(Cours : module biotechnologies végétales(Cours : module biotechnologies végétales

Module M Module M 3333

Pr Pr GuédiraGuédira ))

10 h: techniques de culture in vitro (Pr Guédira) 5h: Amélioration classiqueAmélioration classique (Pr Triqui) 6 h : transformation génétique (Pr Bendaou)

1. Définitionsa) La biotechnologie

est ensemble de techniques biologiques appliquées pour la production appliquées pour la production de la biomasse

à partir de

cellules animales ou végétales. b) Les biotechnologies végétales sont des biotechnologies - techniques industrielles -où le matériel industrielles -où le matériel végétal constitue la matière première. c)Les biotechnologies végétales utilisent la culture des tissus végétaux afin d"améliorer la production agricole ou industrielle.

Elles permettent

l"amélioration et la production des plantes . Les principaux buts des biotechnologies végétales sont :La multiplication massive de plantes saines et/ ou hybrides avec éventuellement une production commerciale. lacréation de nouveaux génotypes par •Sélection de variants somaclonaux ou gamétoclonauxintéressants présentant des caractères de résistance aux stress biotiques ou

résistance aux stress biotiques ou abiotiques).•Haplométhodes (gamètes) •fusion de protoplastes

•transformation génétique

Utilisation des cellules végétales

pour la production massive de molécules à forte valeur ajoutéemétabolites secondaires: métabolites secondaires: médicaments, biocarburants (alcool canne à sucre)

Laculturedestissus

termegénéralpourindiquer la culture indiquer la culture aseptiqueet invitro d"unexplant.

Unexplant:*

graine *organe (feuille, racine... morceaud"organe*unun tissutissu (méristème,

épiderme,

*unun tissutissu (méristème,

épiderme,

phloème ....) cellule* protoplaste

Deux types de cellules

1. Cellules meristématiques

- petites isodiamétriques , -N/C élevé, -N/C élevé, -mitoses actives - pas de méats intercellulaires.

2. Différenciation cellulaire

spécialisation de la forme et de la fonctionAu niveau de la cellule avec l"âge. Au niveau de la cellule avec l"âge. Cellules grandes fonctions précise peu ou pas de division.

Dédifférenciation cellulaire

: les cellules différenciées peuvent se transformer en cellule transformer en cellule non différenciéegrâce à la culture in vitro

Epiderme de l"hypocotyle du lin cellules

différenciées témoin

Epiderme au début du traitement avec la BAP

DEBUT DE DIVISION DES NOYAUX

FORMATION DE CELLULES MERISTEMATIQUES

La culture in vitro

: se base sur la propriété de la dédifférenciation cellulaire imposée par la culture cellulaire imposée par la culture in vitro

Totipotence:

aptitude de la cellule végétale à exprimer la totalité de ses potentialités la totalité de ses potentialités pour donner un organisme entier. La totipotentialitécellulaire s"accompagne par multiplication indéfinie que l"on peut observer dans les zones de croissance de la dans les zones de croissance de la plante : les méristèmes, cellules restantdans un état de dédifférenciation permanent.

2. Historique de la CULTURE IN VITRO

1902HABERLANDT :pensait isoler des cellules

pensait isoler des cellules puis les rassembler pour constituer un tissu

1934 White (USA): croissance indéfinie de pointe de racine de tomate

pointe de racine de tomate (macro et micro+ vit B1 et B2)

1939 WHITE : prolifération cellulaire tomate (macro et micro+

tomate (macro et micro+ vit B1 et B2 et auxine

3. Caractéristiques des techniques de la culture des in vitroa.Asepsie:

en absence de microbes qui peuvent envahir le milieu et qui peuvent envahir le milieu et introduire des éléments inconnus (toxines) dans le milieu de culture

Présence de matières

organiques dans le milieu Nécessité de l'asepsieRisque de prolifération de contaminants

Maintien de la

propreté du laboratoire

Stérilisation des

milieux par autoclavage ou ultrafiltration

Mise en culture

dans des conditions aseptiques

Autoclave

Stérilisation des

Stérilisation des

milieux

à la vapeur d'eau

par autoclavage 1 bar(120°C) pendant 20 mn

Stérilisation des milieux de culture par

filtration : filtre millipore 22µm pour les substance pour les substance thermolabile (zéatine... vitamines ....)

Mise en culture: flux laminaire

paillasse balayée par l"air filtré stérilisé Le manipulateur doit rincer ses mains avec une solution mains avec une solution antiseptique.

Il faut aussi

éviter toutes les actions

pouvant amener des contaminants comme la parole, la toux Etc.

Tous les instruments utilisés doivent être

doivent être flambés après immersion à l'alcool

Verrerie, papiers... à l"étuve

l"étuve180°C ( sec )pendant 2h

Stérilisation du matériel végétalMéthode dépend: - des conditions de culture de la plante mère,

plante mère,- explant réside ou non,- âge , état sanitaire , proximité du sol , type de pathogènes Produit utilisés pour une désinfection superficielle (externe) -Laver bien à l"eau puis -rinçage rapide dans l"alcool 70 °C

°C-Hypochlorite de Ca ou de Na

20mn puis rinçage-

organes prétraitements traitements Post-traitementssemences Immersion

Alcool

70°C10"-20"Ca(ClO)2 10%

20-30"3 lavages eau

stérile fruits fleurs Laver avec coton imbibé Alcool 70°C Na(ClO)2 2%

10"idem

tiges

Eau courante

Na(ClO)

2 2% idem

Exemples de traitements pour la stérilisation

tiges Eau courantePuis frotter avec coton imbibé Alcool

70°C

Na(ClO)

2 2% 5-30" idem

Organes de

réservesEau courante (long temps)Na(ClO)2 2%

20-30"idem

feuilles

Laver rapide

Alcool 70°C Hgcl2 0,1

1" (chlorure de

mercure)6 lavages -Utilisation des antibiotiques dans le cas infections bactériennes externe

Pénicilline

Rifampicine

Infections bactériennes interne : antibiotiques dans le milieu de culture ( problème: variants)

b. Milieu de culture:La composition du milieu de culture est totalement connue:La composition du milieu de culture

dépend de beaucoup de culture dépend de beaucoup de facteur dont les plus importants sont : le matériel végétal (espèce, variété, cultivar. .Etc.), le type d"explant (taille) , l"objectif de la culture. L" eau et les sels minéraux essentiels. Le milieu de Murashige et Skoog en 1962 est le plus largement utilisé. Les matières organiques comprenant un sucre et des En général, le milieu comprend: comprenant un sucre et des vitamines. Des régulateurs de croissance. Le pH du milieu est en général ajusté vers 5.8 par quelques gouttes de NaOH ou Hcl.

Un gélifiant

pour maintenir l"explant en surface

Certaines

espèces nécessitent de fortes teneurs en ions pour pousser, tandis que d"autres pousser, tandis que d"autres connaissent des toxicités auxquotesdbs_dbs25.pdfusesText_31
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