Présentation PowerPoint
Les lesions (modifications) radio-induites de l'ADN. Base modifiée. Site abasique. Cassure simple brin. Cassure double brin. Pontage intra-brin.
La réparation des cassures double brin de lADN chez les
Cette cassure simple brin peut initier la RH (Meselson et Radding 1975) o u peut être comblée par une polymérase pouvant synthétiser de l'ADN face à une
Réparation des lésions de lADN radio-induites et radiosensibilité
Cassure double-brin ? Recombinaison homologue ? Suture non homologue (NHEJ) ? Hypoxie base et 1 000 cassures simple brin par gray contre.
Mise en évidence de cassures double brin de lADN induites par
15 ene 2009 qu'il s'agisse de cassures simple brin (CSB) ou de cassures double ... Pour chaque cassure double brin de l'ADN 2000 molécules d'histone.
Les électrons de très faible énergie produisent des lésions de lADN
Cassures simple brin. Cassures de brins par électron incident (x10 cassure simple brin (B) suivie d'une réaction subséquente du fragment formé.
Mécanismes de réparation dune cassure double-brin et résection
FIGURE 13 : MODELE DE RESECTION D'UNE CASSURE DOUBLE-BRIN. complémentaire lorsqu'un des deux brins est sous forme d'ADN simple brin. La modification.
Mécanismes de réparations dune cassure double-brin et résection
11 jul 2022 d'endonucléase (dépendant de son activité ATPase) capable d'induire une cassure simple brin. Chez Homo sapiens (et les mammifères) ...
Présentation PowerPoint
PARP et BRCA. Cassure simple brin : Réparation par BER. Rôle de PARP. Cassure double brin : Réparation par RH. Rôle de BRCA. Inhibiteur de PARP
Etude des voies de réparation des cassures double brin de lADN
CSB Cassure simple brin. CDB Cassure double brin. cHL Classical Hodgkin's Lymphoma. CLL Chronic Lymphocytic Leukemia. CML Chronic myeloid leukemia.
Rôle de protéines de la réparation des cassures double brin dans l
28 ago 2012 CSB : Cassure Simple Brin. D-loop : « Displacement loop ». dNTP : désoxyriboNucléotides Tri-Phosphate. DSBR : « Double Strand Break repair ».
Les dommages à lADN et leur réparation - Planet-Vie
16 jui 2014 · Une cassure double brin d'ADN est reconnue par le complexe MRX (A) ce qui permet l'activation de la voie de signalisation et soit la
[PDF] Mécanismes de réparation dune cassure double-brin et résection
MECANISMES DE REPARATION DES CASSURES DOUBLE-BRIN ET REPETITIONS complémentaire lorsqu'un des deux brins est sous forme d'ADN simple brin
[PDF] 2 La réparation de lADN-Dahmani Inespdf
Certains agents mutagènes (comme les radiations ionisantes) peuvent aboutir à des cassures de brins qui touchent soit un brin (cassure simple brin)
[PDF] La réparation des cassures double brin de lADN chez les mammifères
Type de lésion Nombre de lésions/cellule/Gy Cassures simple brin Dommages de bases Liaisons covalentes ADN-protéine 150 Cassures double brin
Quantification des cassures simple et double brin suite à la
Une cassure simple brin est comptabilisée à chaque fois qu'il y a rupture de chaîne tandis qu'une cassure double brin est définie par une rupture simple sur
[PDF] Etude des voies de réparation des cassures double brin de lADN
La CDB est détectée et les extrémités 5' subissent la résection par un ensemble de facteurs (BRCA1 CtIP MRN et EXO1) les extrémités 3' sortantes simple brin
[PDF] XRCC1 un élément clef de la réparation des dommages de lADN
(BER) réparation des cassures simple-brin de l'ADN (SSBR) recombinaison non homo- logue (NHEJ) recombinaison homologue (HR) réparation par excision de
[PDF] N O U V E L L E S - iPubli
forme de cassures simple et double brins à des énergies bien plus basses que celles pour lesquelles survient une ionisation de l'ADN qui est de 8
[PDF] Chapitre 7 - Hybridation des acides nucléiques
La technique de nick translation (déplacement de cassure) repose sur la réparation de cassures (nicks) simple brin dans l'ADN formant des extrémités 3? OH et 5
Interaction rayonnement et ADN
Ouverture sur la radiothérapie
Jean-Luc RAVANAT
DRF/Inac/SyMMES/CIBEST
OOP O OH O N N N N NH2 O OOP O OH O N N O O OOP O OH O N N N NH O NH2 OOP O OH O N N O NH2 HAdénine
Thymine
Guanine
Cytosine
La molecule G·$G1Base
SucrePhosphate
Cellules eucaryotes: 3x109pairesde bases
(1-2 m/cellule)Arrangement en double hélice
Sucre + Base = nucléoside
Sucre + Base + Phosphate = nucléotide
OctamèreG·OLVPRQHV : 2 (H2A, H2B, H3, H4)
La molecule G·$G1
La molecule G·$G1: Fonctionsbiologiques
La réplication (duplication)
-les 2 cellules filles ont le même code génétique (idem cellule mère) -1 brin nouvellement synthétisé et 1 brin de la cellule mère mutation(changement du code génétique) $G1 VXSSRUP GH O·LQIRUPMPLRQ génétiqueTransmission aux cellules filles
La molecule G·$G1: Fonctionsbiologiques
Synthèse des protéines
1 Transcription
ADN -> ARNm
Dans ARN bases A,G,U et C et Ribose
2 Traduction
ARNm -> protéines (20 acides aminés)
Les radiations électromagnétiques
I·$G1 HVP-il une cible importante du rayonnement ionisant?La dose nécessaire pour tuer une cellule est environ 100 fois plus élevée si elle est déposée
GMQV OH Ń\PRSOMVPH TXH TXMQG HOOH HVP GpOLYUpH GMQV OH QR\MX ŃRQPHQMQP OM PROpŃXOH G·$G1"
Effet du rayonnement sur les êtres vivants:
La radiobiologie
PhysiqueChimieBiologie
Interaction
Rayonnement matière
Formation des
radicaux (EROs)Piégeage des radicaux
Formation des lésions
Conséquences des
modifications des biomoléculesTemps (s)
110110210-110-210-3
De la physique à la biologie en passant par la chimieQuels sont leur rendement de formation ?
Quelles sont les conséquences biologiques de ces lésions:Réparation ?
Mutagénèse ?
Létalité cellulaire ?
Les lesions (modifications) radio-induitesde O·$G1Base modifiée
Site abasique
Cassure simple brin
Cassure double brin
Pontage intra-brin
Pontage inter-brin
ADNLésions
RIMutations
Réplication
Réparation de O·$G1 (mécanisme dépend de la lésion)Réparationfidèlede lesions de O·$G1
Réparation par excision de nucléotidesRéparation par excision de baseUn seul brin étant modifié,
pour re-synthétiser la Réparationnon fidèlede lesions de O·$G1(CDB) O HH e-aq, H°,HO°Effets Indirects
5MGLRO\VH GH O·HMX
Particule
e-Effet direct:
Ionisation
Effets directs et indirects du rayonnement ionisant quasi-direct» Lésions radio-LQGXLPHV GH O·$G1 MVSHŃPV PpŃMQLVPLTXHV¾Effet direct
Formation de radicaux cations
-Déprotonation -Hydratation¾Effets indirectes (radiolyse de l'eau)
Lésions produites par HO°
-Addition sur les doubles liaisons -Arrachement d'un atome d'Hydrogenɇ2Ɉhɇ2Ɉ+ɟ-
ɇ2Ɉhɇ2Ɉ*ɇɨɇɈɨ
ɇ2Ɉɇ+Ɉɇɨ
ɇ2Ɉ+Ɉɇ-ɇ2ɈɈɇɨ
ɇ3Ɉ+ɟ-ɇ2Ɉɇɨ
IM UMGLRO\VH GH O·HMX XQ phénomène complexe HO°principalement impliqué dans la formation des lésions Les lésions des bases induites pas les radiations :Aspects mécanistiques.
Oxydation à un
électron
+ déprotonationOxydation à un
électron
+ hydratationArrachement d'H
Addition de HO°sur
les doubles liaisonsEffet directEffet indirect
La nature chimique des modifications produites par les effets direct et indirect est la même, mais les rendement sont différents Les lésions sont aussi produites par le stress oxydatif endogène (via les EROs) Identification des lésions : stratégie expérimentale. Etudes sur les monomers, exposé aux radiations ionisantesNucléosides
Nucléotides, court oligonucléotides
GpYHORSSHPHQP G·XQH PpPORGH GH GpPHŃPLRQ
Hydrolyse du polymère (enzymatique ou chimique)HPLC-Fluorescence, electrochimique
HPLC-MS/MS
Détermination du mécanisme de formation
Irradiations sous différentes conditions
Autres stress oxydatifs
Marquage isotopique (H218O, 18O2)
Isolation et identification des dérivés produits HPLCRMN (1H, 13C, 15N, 1D et 2D)
6SHŃPURPpPULH GH PMVVH "
Exemple: Décomposition de la 2-désoxyguanosine8-oxodGuoFapy-dGuo
Oxazolone
Effet direct
Effet indirect
8-oxodGuo la lésion la plus étudiée
0HVXUpH GMQV O·$G1 HQ 1E84
Decompositionde la thymidine (nucléoside)
Déprotonation
Hydratation
Effet direct
30%70%
Effet indirect
ArrachementG·+
Addition
5% 95%Decompositionde la thymidine (nucléoside)
Aujourd'hui il y a enǀiron 80 modifications de l'ADN radio-induites identifiées ! (IIHP GLUHŃP GMQV O·$G1 GRXNOH NULQ ¾Odžydation de l'ADN (perte d'un Ġlectron)Formation des radicaux cations
Cyt°+, Gua°+, Ade °+, Thy°+
¾Transfert d'Ġlection dans l'ADN
Guapossğde le plus bas potentiel d'odžydation Transfert d'e-de Guaà Thy°+, Ade °+, Cyt°+їFormation préférentielle de Gua+°
¾L'odžydation ă un Ġlectron de l'ADN double brin produit principalement une oxydation de la base guanine.Effets indirects sur le 2-déoxyribose
¾Réactionde HO°avec le désoxyribose
-arrachement d'H en 2',3',4',5'͗Formation de cassures simple brin (CSB)
-arrachement d'H en 1' Dans l'ADN enǀiron 30й de HO°réagit avec le 2- dĠodžyribose et 70 й aǀec les bases de l'ADN1'3'2'
5' 4'8-oxo-dGuo
Formation de lésions plus complexes
Réaction des radicaux avec
8-put-dGuo8-spd-dGuo8-sp-dGuo
Pontages ADN-polyamine
Pontages ADN-protéine
"réparation»Formation de lésions plus complexes
Réaction des radicaux avec
d'autres bases de l'ADNPontage
intra-brinsLésions
Tandem
C OC.Radical
enÛOH
Coupure
Pontage
Inter-brins
Formation de lésions plus complexes
3RQPMJHV VXLPH j O·R[\GMPLRQ GX GpVR[\ULNRVH
proteinesPontage
ADN-protéines
Formation de lésions plus complexes, les CDB
Y additionCassure +
base oxydéeYArrachement
d'H CDB R E P A R A T I O N I·$G1 SHXP rPUH UpSMUp pour éviter les mutationsExemple: La réparation de la 8-oxodGuo
G CC G°Irradiation
A G°Replication
A TReplication
Mutation
GC ї TA
C MutM hOGGPol A MutM hOGG Pol I·$G1 SHXP rPUH UpSMUp pour éviter les mutationsExemple: La réparation de la 8-oxodGuo
G CC G°Irradiation
A G°Replication
A TReplication
Mutation
GC ї TA
C MutM hOGGMutY G° Pol G CReplication
dGTP dGTP° irradiation dGMP°MutT Pol Pour cela il faut une réparation fidèle (sans modification de la séquence) Rendement de formation des lésions (nombre/cell/Gy) -40 cassures double-brins (CDB) -1000 cassures simple-brins (CSB) -200 pontages (avec proteinsou interbrins) -2000 oxydation des bases etdeleurmutagénicité! Pour les radiations ionisantes: importance des CDB et des lésions en cluster (sites multi-lésés)Pourquoi ?
IpVLRQV GH O·$G1 IRUPpHV SMU OHV UMGLMPLRQV LRQLVMQPHV Formation des sites multi-lésés (incluant CDB) ¾Particularité du rayonnement ionisant / stress oxydatif endogèneParticule
Multiples ionisations
Lesionssimples
(formation aléatoire)Sites multi-lésés
(dont CDB) Les lésions produites par les radiations ionisantes ne sont pas chimiquement différentes de celles produites par le stress oxydatif endogène (EROs) Mais leur distribution dans l'ADN est diffĠrente ͊EROsendogènes
Les sites multi-lésés
¾Plusieurs dommages de l'ADN dans 1 ă 2 tour d'hĠlice¾Complexité chimique de ces dommages
9CDB : combinaison de deux CSB
9avec différentes natures chimiques des CSB
9Hétérogénéitédes sites multi-lésés
-CSB + base endommagée -CSB + site abasique -site abasique + base endommagée -deux sites abasiques -deux bases endommagées -CSB + site abasique + base endommagéeLa compledžitĠ augmente aǀec la densitĠ d'ionisation (transfert linĠaire d'Ġnergie TEL)
TEL: énergie transférée par une particule ionisante traversant la matière, par unité de distance
Particule de bas TEL (X, )
Augmentation
de la densité des dommagesLes sites multi-lésés
La complexité des lésions augmente avec le TEL Plus les dommages sont complexes et moins la cellule arrive à les réparer fidèlement. Les rayonnement de haut TEL sont plus nocifs pour les cellules. 32Efficacité biologique relative (EBR)
rayonnements Comparaison par rapport à un rayonnement standardStandard : 250 kV X rays; 60Co rays
Par exemple:
LD50pour 250 kVpx-rays = 6 Gy
LD50pour des neutrons de 2 MeV = 3 Gy
Donc, L'EBR pour des neutrons de 2 MeV est de 2
IM UpSRQVH ŃHOOXOMLUH MX[ GRPPMJHV GH O·$G1
5{OH SURPHŃPHXU SRXU OLPLPHU O·LQVPMNLOLPp JpQpPLTXH VRXUŃH GH PXPMPLRQ HP ŃMQŃHU
(p53, Chk1, Chk2,Protéine
kinase composants du cycle cellulaire, facteurs de transcription, protéines de la réparationApoptose
arrèt de cycle réparation de l'ADN $75 $70"Apoptose
Arrêt cycle
cellulaireRéparation de
Protéines du cycle cellulaire,
facteurs de transcription, histone H2AX, protéines de réparation kinasesRadiations ionisantes
CSB, CDB, Bases
PRGLILpHV "B
(mort cellulaire programmée)Transcription
Remodelage de la chromatine
Phosphorylation
En réponse à la formation de CDB, la chromatine (histone H2A autour de la lésion est abondamment phosphorylée par la kinase ATM. Il est possible de détecter cette phosphorylation MQPLŃRUSV TXHOTXHV VHŃRQGHV MSUqV O·LUUMGLMPLRQLa détection de
foci H2AX foci permet de détecter les CDB dans les cellules. Exemple de réponse aux dommages : formation de foci-H2AX Le nombre de foci-H2AX correspond au nombre de CDBVisualisation par immunofluorescence
1 focus # 1 CDB
Environ 40 CDB par cellule par Gy
-H2AX fociDose (Gy)
La visualisation des focipermet de suivre la formation et réparation des OpVLRQV GH O·$G1 GLUHŃPHPHQP GMQV OHV ŃHOOXOHV Merci à B Jakob, G Taucher-Schloz, GSI, Allemagne Formation et réparation de CDB (foci-H2AX)dans des cellules irradiées avec des ions lourdsTraces des ions
Effets des radiations sur la cellules : survie cellulaire Dose létale 50 (DL50) dose pour laquelle 50 % des cellules sont mortes Les cellules n'ont pas toutes la mġme sensibilitĠ audž radiationsFraction survivante
1,0 0,1 0,01 0,001Dose (Gy)
204681012
IHV ŃHOOXOHV TXL UpSMUHQP PMO OHV GRPPMJHV GH O·$G1 VRQP SOXV sensibles aux radiationsWild type : cellules normalesnon mutées
Autres, cellules mutéespour un gene de signalisation/reparation de O·$G1. Lésions produites par une irradiation / stress endogène radioinduitsendogenesDommage par Gypar cellule
par cellule par jourCSB100010000 -55000
Bases modifiées20003200
Sites Abasiques25012600
CDB40 *8
Pontages ADN-protéine 150 *Très peu
Lésions en clusters130 *Très peu
CSBBase modifiée
Site abasique
Pontage
quotesdbs_dbs43.pdfusesText_43[PDF] recombinaison homologue mécanisme
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