[PDF] FICHE TECHNIQUE TP HISTOLOGIE - PREPARATION DUNE





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Les colorations histologiques - Université Paris-Saclay

Les coupes du bloc de paraffine sont réalisées avec un microtome permettant d’obtenir des sections (coupes histologiques) de 3 à 5 microns d’épaisseur Les coupes sont recueillies sur des lames de verre et mises à sécher (sur la nuit à 40-45°C ou 1H max 60°C) - La plupart des tissus sont transparents



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1- Préparation des coupes pour observation au microscope optique [Figure 1] Pour l’étude histologique classique la préparation des coupes fines se fait en plusieurs étapes : a) Prélèvement Le prélèvement effectué sur un organe doit se faire aussi délicatement que possible afin de ne pas meurtrir les tissus

  • Déshydratation

    Les échantillons fixés dans des solutions aqueuses ne peuvent être imprégnés en paraffine directement. L’eau des tissus doit être éliminée par déshydratation dans une succession de bains d’éthanol de concentration croissante (70%, 95% à 100%).

  • Clarification

    Bien que le tissu soit maintenant essentiellement exempt d’eau, il ne peut toujours pas être imprégné dans la paraffine car celle-ci est non miscible dans l’éthanol. Il faut utiliser un solvant intermédiaire miscible à la fois dans l’éthanol et dans la paraffine. L’agent de clarification le plus couramment utilisé est le xylène.

Comment faire une coupe histologique ?

La préparation d’une coupe histologique consiste à réaliser des sections, c’est-à-dire des tranches très fines de tissus destinés à être observés par transparence au microscope. Les coupes à congélation présentent certains avantages que la technique en paraffine n’offre pas : la congélation permet une conservation optimale de l’ADN et de l’ARN.

Comment faire des coupes fines dans un tissu biologique ?

Le but est d’éliminer l’eau des tissus et de la remplacer par un milieu qui se solidifie pour permettre la réalisation de coupes fines (4 à 5µm). Pour cela, le tissu biologique doit être inclus dans une matrice dure (paraffine). Les principales étapes de ce processus sont la déshydratation, la clarification et l’imprégnation. Déshydratation

Comment faire des coupes de tissu?

Les coupes sont recueillies sur des lames de verre et mises à sécher (sur la nuit à 40-45°C ou 1H max 60°C). - La plupart des tissus sont transparents ?Les colorationsréalisées sur lames, accentuent les contrastes pour pouvoir reconnaîtredifférents éléments du tissu. LES ETAPES DE LA COLORATION -Déparaffinage (toluène / xylène - éthanol)

Comment traiter les tissus biologiques ?

Traitement des tissus Le but est d’éliminer l’eau des tissus et de la remplacer par un milieu qui se solidifie pour permettre la réalisation de coupes fines (4 à 5µm). Pour cela, le tissu biologique doit être inclus dans une matrice dure (paraffine). Les principales étapes de ce processus sont la déshydratation, la clarification et l’imprégnation.

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  • technique de préparation des coupes histologiques

    PDF Télécharger Les techniques de microscopies optique et électronique technique de préparation des coupes histologiques technique histologique but et principe,technique histologique microscope photonique,les étapes de préparation d'une coupe histologique,les applications des techniques histologiques,histologie fixation, lgo algo-sr relsrch richAlgo" data-155="6463b6afed8d5">pdfprof.com › PDF_Doc_Telecharger_Gratuitstechnique de préparation des coupes histologiques - PDF Prof pdfprof.com › PDF_Doc_Telecharger_Gratuits Cached

- Faculté de médecine

1ère année de médecine Année universitaire : 2019/2020

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FICHE TECHNIQUE TP HISTOLOGIE

- HISTOLOGIQUE -

OBJECTIFS SPECIFIQUES :

¾ Décrire les étapes de

¾ Connaître en détail les techniques histologiques de routine et comprendre le rôle de chaque réactif utilisé

¾ Comprendre la c

MATERIELS

VERRERIES

Lame & Lamelle

cuve de coloration en verre (type Coplin & type Hellendhal)

Cuve de rinçage en verre

Cristallisoir

Bécher

Entonnoir

Erlenmeyer

Compte-goutte Pipette Pasteur

MATERIELS

Microtome

Etuve - Faculté de médecine

1ère année de médecine Année universitaire : 2019/2020

2

Plaque chauffante Barres de Leuckart

Microscope photonique

REACTIFS

Formol

Liquide de Bouin

Alcool absolu à 100°

Eau distillée

Xylène

Toluène

Paraffine

Colorants (Hématéine éosine Safran -vert lumière-

Baume de Canada

Nombre de postes : 15 postes par binôme

- Faculté de médecine

1ère année de médecine Année universitaire : 2019/2020

3 - Faculté de médecine

1ère année de médecine Année universitaire : 2019/2020

4

11 ETAPES

1. Prélèvement

Le prélèvement doit se faire aussi délicatement que pos tissulaire. Une fois obtenu, ce prélèvement doit immédiatement être immergé dans un grand volume de liquide fixateur.

2. Fixation

La fixation a pour but la conservation des structures dans un état aussi proche que

possible de leur état vivant, avec arrêt de toutes activités mitotique et enzymatique. Ainsi que

le durcissement de la pièce anatomique. Les liquides fixateurs les plus utilisés en pratique courante sont le formol ou le liquide de Bouin La durée de la fixation varie selon le volume des prélèvements.

3. Déshydratation

fine par la suite sans perdre la structure cellulaire initiale au moment de la rupture de la rations croissantes (de lcool à dilué .

4. Imprégnation

le xylène ou le toluène, solvant intermédiaire

5. Inclusion

Le prélèvement baigne dans de la paraffine fondue (chauffée à 56°C pendant 4h dans une étuve) et qui infiltre alors toutes les cellules.

Remarque :

laboratoires de routine - Faculté de médecine

1ère année de médecine Année universitaire : 2019/2020

5

6. Mise en bloc

liquide est coulée dans un petit moule en métal

" Barres de Leuckart ». Après refroidissement (dans un congélateur pendant toute une nuit),

paraffine dur prélevée est rigide en pr cellule composant le tissu. OU

7. Confection des coupes histologiques

Le passage du bloc de paraffine dans un microtome permet de réaliser des sections de 2 à

5 µm disposées en séries ré

- Faculté de médecine

1ère année de médecine Année universitaire : 2019/2020

6 la confection des coupes histologiques comporte alors 3 étapes : - : de segments de ruban de paraffine sur une lame de verre contenant un eau albumineuse. - Le collage : les lames de verre sont placées sur une plaque chauffante, réglée à une température de 40°C, pendant 15 min. - Le séchage de la préparation : en inclinant les lames et en les séchant au moyen de papier buvard absorbant.

8. Déparaffinage

-à-dire plaque chauffante (de 45 à 60°C) périphérique.

Plaque chauffante

9. Réhydratation

50eau distillée.

10. Coloration

constituants tissulaires (noyau, membrane plasmique et cytoplasme).

10-1 Par histochimie :

La coloration se base sur des réactions chimiques connues entre des réactifs de laboratoire (colorants) et des composants des tissus étudiés. Ex1 : coloration hématéine- éosine-safran (HES) est un colorant basique se fixe par affinité aux molécules acides (ADN) permettant de colorer le noyau, de colorer le cytoplasme et le safran se fixe par affinité entre les fibres de collagène. Ex 2 : coloration Bleu Alcian ou du Rouge Mucicarmin : Le mucus présent dans certains tissus peut être coloré par la révélation des mucopolysaccharides acides respectivement en bleu ou en rouge. Ex 3 : coloration à périodique de Schiff (PAS) met en évidence les glucides par un colorant rouge à pourpre. Permettant de mieux visualiser le glycogène ou les mucines contenus dans certaines cellules ou encore les lames basales des épithéliums qui sont riches en glycoprotéines - Faculté de médecine

1ère année de médecine Année universitaire : 2019/2020

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10-2 Par histochimie enzymatique : la distribution tissulaire de certaines enzymes

spécifiques peut être étudiée sur des coupes fraiches en y ajoutant un substrat spécifique de cet enzyme. un produit de réaction primaire, insoluble et pouvant être mis en évidence par une coloration. La plupart des systèmes enzymatiques sont détruits lors de la fixation, enzymatique sont le plus souvent réalisées sur coupes en congélation. Ces techniques permettent de

10-3 Par Immunohistochimie : Des anticorps spécifiques sont utilisés pour venir se

fixer à une molécule (antigène) de la coupe histologique. partir de la protéine purifiée est couplé à:

9 une enzyme (peroxydase) qui catalyse une réaction avec production de couleur

9 un marqueur (fluorophore), le plus souvent fluorescent. On parle alors

à fluorescence.

11. Montage & Observation microscopique

Les coupes colorées sont montées entre lame et lamelle avec une résine synthétique

On obtient, ainsi, une préparation histologique (ou par abus de langage : une lame histologique) prête à être observée au microscope optique.quotesdbs_dbs44.pdfusesText_44
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